معلومة

الفرق بين cerebroside و globoside

الفرق بين cerebroside و globoside


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

لدي فكرة عامة عن اختلافهم في أن cerebrosides تحتوي على سكر واحد بينما تحتوي globosides على أكثر من سكريات.

هذا هو هيكل سيراميد (سيفينجوزين وحمض دهني مرتبطين من خلال ارتباط أميد).

ليس من الواضح بالنسبة لي أن cerebrosides لها سكاريد أحادي واحد فقط على مجموعة OH واحدة من syphingosine ، واثنين من السكريات الأحادية في كل مجموعة من مجموعتي OH ، أو oligosaccharide واحد على مجموعة واحدة فقط من OH.

وبالمثل ، لست متأكدًا مما إذا كان الجلوبوزيدات يحتوي على قليل السكاريد واحد فقط - مجموعة OH من syphingosine ، أو اثنين من السكريات الأحادية في كل مجموعة من مجموعتي OH ، أو اثنين من السكريات قليلة السكاريد في كل مجموعة من مجموعتين - OH.

إذا كان لديك أي معرفة عن هذا ، يرجى المشاركة. شكرا.


هذه موسوعة عن cerebroside https://www.guidechem.com/dictionary_keys_cerebroside-p1.html وهذا عن globoside https://www.guidechem.com/dictionary_keys_globoside-p1.html https://en.wikipedia.org/wiki/Globoside آمل أن يساعدك هذا.


2.7: الأحماض الدهنية

  • بمساهمة إ. ف. وونغ
  • Axolotl Academica Publishing (علم الأحياء) في Axolotl Academica Publishing

على عكس السكريات الأحادية والنيوكليوتيدات والأحماض الأمينية ، فإن الأحماض الدهنية ليست مونومرات مرتبطة ببعضها البعض لتكوين جزيئات أكبر بكثير. على الرغم من أنه يمكن ربط الأحماض الدهنية معًا ، على سبيل المثال ، في ثلاثي الجلسرين أو فوسفوليبيد ، إلا أنها لا ترتبط ببعضها البعض بشكل مباشر ، ولا تزيد بشكل عام عن ثلاثة في جزيء معين. الأحماض الدهنية نفسها عبارة عن سلاسل طويلة من ذرات الكربون تعلوها مجموعة الكربوكسيل. يمكن أن يختلف طول السلسلة ، على الرغم من أن معظمها يتراوح بين 14 و 20 ذرة كربون ، وفي النباتات والحيوانات ذات الترتيب الأعلى ، تعد الأحماض الدهنية التي تحتوي على 16 و 18 كربونًا هي الأنواع الرئيسية.

الشكل ( PageIndex <13> ). أحماض دهنية. (أعلى) حمض الستريك هو حمض دهني مشبع بالكامل بدون روابط كربون-كربون مزدوجة. (أسفل) حمض الأوليك هو حمض دهني غير مشبع.

نظرًا لآلية التوليف ، تحتوي معظم الأحماض الدهنية على عدد زوجي من الكربون ، على الرغم من أنه يمكن أيضًا إنشاء سلاسل الكربون ذات الأرقام الفردية. يمكن إنشاء المزيد من التنوع من خلال الروابط المزدوجة بين الكربون. سلاسل الأحماض الدهنية التي لا تحتوي على روابط مزدوجة مشبعة ، لأن كل كربون مشبع بأكبر عدد ممكن من ذرات الهيدروجين المترابطة. سلاسل الأحماض الدهنية ذات الروابط المزدوجة غير مشبعة (الشكل ( فهرس الصفحة <13> )). يطلق على أولئك الذين لديهم أكثر من رابطة مزدوجة متعددة عدم التشبع. الأحماض الدهنية في الخلايا حقيقية النواة مقسمة بالتساوي تقريبًا بين الأنواع المشبعة وغير المشبعة ، وقد يكون العديد من هذه الأخيرة غير مشبعة متعددة. في بدائيات النوى ، يكون التشبع المتعدد نادرًا ، لكن التعديلات الأخرى مثل التفرع والدوران تكون أكثر شيوعًا من حقيقيات النوى. ويرد أدناه جدول الأحماض الدهنية الشائعة.

حمض ميرستيك 14: 0 (14 ذرة كربون ، بدون روابط مزدوجة
حمض البالمتيك 16:0
حامض دهني 18:0
حمض الأراكيد 20:0
حمض البالميتوليك 16:1
حمض الأوليك 18:1
حمض اللينوليك 18:2
حمض الأراكيدونيك 2:4

هناك اختلافات فيزيائية كبيرة بين الأحماض الدهنية المشبعة وغير المشبعة بسبب هندسة الكربون مزدوج الترابط. الأحماض الدهنية المشبعة مرن للغاية مع الدوران الحر حول جميع روابط C-C الخاصة به. تعمل المخططات والصيغ الخطية المعتادة التي تصور الأحماض الدهنية المشبعة أيضًا على تفسير قدرة الأحماض الدهنية المشبعة على التكتل بإحكام معًا ، مع مساحة متداخلة صغيرة جدًا. من ناحية أخرى ، فإن الأحماض الدهنية غير المشبعة غير قادرة على حزمها بإحكام بسبب قيود الدوران التي تفرضها الرابطة المزدوجة. لا يمكن للكربون أن يدوروا حول الرابطة المزدوجة ، لذلك يوجد الآن & ldquokink & rdquo في السلسلة. بشكل عام ، يكون الكربون مزدوج الترابط في الأحماض الدهنية في تكوين رابطة الدول المستقلة ، مما يؤدي إلى حدوث انحناء بمقدار 30 درجة في الهيكل.

الشكل ( PageIndex <14> ). الدهون الثلاثية. تتشكل هذه الدهون عن طريق اقتران الجلسرين مع ثلاث سلاسل أسيل دهنية من خلال روابط استر من كل أكسجين جلسرين.

الأحماض الدهنية داخل الخلايا عادة ما تكون أجزاء من جزيئات أكبر ، بدلاً من الأحماض الحرة. بعض الدهون الأكثر شيوعًا المشتقة من الأحماض الدهنية هي ثلاثي الجلسرين ، الفوسفوجليسريد ، والسفينجوليبيدات. Triacylglycerols ، كما يوحي الاسم ، عبارة عن ثلاث سلاسل من الأحماض الدهنية (الأسيل) متصلة بجزيء الجلسرين بواسطة روابط استر (الشكل ( فهرس الصفحة <14> )). قد تحتوي Triacylglycerols ، المعروفة أيضًا باسم الدهون الثلاثية ، على أحماض دهنية من نفس الأحماض (triacylglycerols) أو أنواع مختلفة (triacylglycerols مختلطة). مخاليط من هذه هي جزيئات تخزين الطاقة الأولية طويلة الأجل لمعظم الكائنات الحية. على الرغم من أنه قد يشار إليها بالعامية بالدهون أو الزيوت ، فإن الاختلاف الحقيقي الوحيد هو درجة تشبع الأحماض الدهنية المكونة لها. المخاليط التي تحتوي على نسب أعلى من الأحماض الدهنية المشبعة لها نقطة انصهار أعلى وإذا كانت صلبة في درجة حرارة الغرفة ، يشار إليها باسم الدهون. مخاليط Triacylglycerol المتبقية في درجة حرارة الغرفة هي الزيوت.

في الطب البشري ، الاختبار الشائع لعوامل خطر الإصابة بأمراض القلب هو قياس مستويات الدهون الثلاثية في الدم. على الرغم من أن أنواع الخلايا المختلفة يمكن أن تصنع وتستخدم الدهون الثلاثية ، إلا أن معظم الدهون الثلاثية لدى الأشخاص تتركز في الأنسجة الدهنية ، والتي تتكون من الخلايا الدهنية أو الخلايا الدهنية ، على الرغم من أن الكبد يعد أيضًا مخزنًا مهمًا للدهون. تخصصت هذه الخلايا في حمل الكريات الدهنية التي تشغل معظم حجم الخلية. عندما تكون مستويات الدهون الثلاثية في الدم مرتفعة ، فهذا يعني أن الدهون يتم إنتاجها أو تناولها بشكل أسرع مما يمكن أن تمتصه الخلايا الشحمية.

الشكل ( PageIndex <15> ). الفسفوليبيد: العمود الفقري للجليسرول (أحمر) يتصل بحموضين دهنيين ومجموعة الفوسفات والرأس القطبية.

الفسفوليبيدات (وتسمى أيضًا فوسفوجليسريد أو جليسيروفوسفوليبيد) ، تعتمد أيضًا على ارتباط الأحماض الدهنية بالجلسرين. ومع ذلك ، بدلاً من ثلاثة ذيول أسيل دهنية ، هناك اثنان فقط ، وفي المركز الثالث مجموعة الفوسفات (الشكل ( فهرس الصفحة <15> )). ترتبط مجموعة الفوسفات أيضًا بـ & ldquohead group & rdquo. تحدد هوية مجموعة الرأس اسم الجزيء ، إلى جانب ذيول الأسيل الدهنية. في الشكل المثال ، يشير 1-stearoyl إلى حامض دهني على 1-كربون من العمود الفقري للجليسرول. 2-بالميتويل يشير إلى حمض البالمتيك على 2-كربون من الجلسرين ، ويشير فوسفاتيدي إيثانولامين إلى مجموعة الفوسفات وإيثانول أمين المرتبط به ، المرتبطة بغليسيرول 3-كربون. بسبب مجموعة الفوسفات سالبة الشحنة ، ومجموعة الرأس التي غالبًا ما تكون قطبية أو مشحونة ، فإن الفسفوليبيدات هي amphipathic - تحمل طابعًا قويًا كارهًا للماء في ذيول الأسيل الدهنية ، وطبيعة محبة للماء قوية في مجموعة الرأس. هذه الأمفيباثيكاتي أمر حاسم في دور الفوسفوليبيد كمكون أساسي للأغشية الخلوية.

الشكل ( PageIndex <16> ). تعتمد السفينجوليبيدات على الكحول الأميني ، السفينجوزين (أ). السيراميد له ذيل من الأحماض الدهنية ، والسيراميد مع مجموعة رأس الفوسفوكولين هو سفينجوميلين (ب). إذا كانت المجموعة الرئيسية عبارة عن سكر ، فإن الجزيء يكون عبارة عن مبيد دماغي. (ج)

الشحميات السفينغولية (الشكل ( فهرس الصفحة <16> )) هي أيضًا مكونات مهمة للأغشية ، ولا تعتمد على العمود الفقري للجليسرول ، ولكن على الكحول الأميني ، أو السفينغوزين (أو ثنائي هيدرو سفينغوزين). هناك أربعة أنواع رئيسية من سفينجوليبيدات: سيراميد ، سفينجوميلين ، سيريبروسيد ، وجانجليوسيدات. السيراميد عبارة عن جزيئات سفينجوزين ذات ذيل من الأحماض الدهنية مرتبطة بالمجموعة الأمينية. السفينجوميلين عبارة عن سيراميدات يتم فيها ربط الفوسفوكولين أو الفوسفويثانولامين بـ 1-كربون. Cerebrosides و gangliosides هي جليكوليبيدات - لديهم سكر أو سكريات ، على التوالي ، مرتبطة بكربون 1 من سيراميد. تحتوي جميع السكريات قليلة التعدد المرتبطة بالعقيدات على بقايا حمض السياليك واحدة على الأقل. بالإضافة إلى كونها مكونًا هيكليًا لغشاء الخلية ، فإن الغانجليوسيدات لها أهمية خاصة في التعرف على الخلايا.

يتم تعريف الدهون بشكل غامض على أنها مركبات بيولوجية غير قابلة للذوبان في الماء ولكنها قابلة للذوبان في المذيبات العضوية مثل الميثانول أو الكلوروفورم. وهذا يشمل مشتقات الأحماض الدهنية المذكورة أعلاه ، ويتضمن الموضوع الأخير لهذا الفصل ، الكوليسترول. الكوليسترول (الشكل ( PageIndex <17> )) هو المشتق البيولوجي الرئيسي للسيكلوبنتانوبيرفينانثرين ، وهو هيدروكربون مشبع يتكون من أربعة تشكيلات حلقية منصهرة. وهو مكون مهم لأغشية البلازما في الخلايا الحيوانية ، وهو أيضًا مقدمة التمثيل الغذائي لهرمونات الستيرويد ، مثل الكورتيزول أو ب-استراديول. تحتوي الخلايا النباتية على القليل من الكوليسترول ، إن وجد ، ولكن توجد أنواع أخرى من الستيرول مثل ستيغماستيرول. وبالمثل ، فإن الفطريات لها الستيرولات الخاصة بها. ومع ذلك ، لا تحتوي بدائيات النوى ، في معظمها ، على أي جزيئات ستيرول.


الإجراءات التجريبية

الحيوانات

كانت جميع إجراءات استخدام الحيوانات متوافقة مع دليل المعاهد الوطنية للصحة لرعاية واستخدام حيوانات المختبر وتمت الموافقة عليها من قبل لجنة رعاية واستخدام الحيوان المؤسسية بجامعة نورث كارولينا. تم الحصول على الفئران الذكور C57BL / 6 J ، بعمر 7 أسابيع ، من مختبرات جاكسون (بار هاربور ، ME ، الولايات المتحدة الأمريكية). في عمر 8 أسابيع ، تم وضع هذه الحيوانات ، التي يبلغ وزنها 24 ± 2 جم ، في طعام Purina Lab المطحون الذي يحتوي على 0.2٪ كوبريزون (مكرر-Cyclohexanone oxaldihydrazone Sigma Chemical Co.، St Louis، MO، USA) لمدة 1-12 أسبوعًا قبل القتل (Hiremath وآخرون. 1998). تم الحفاظ على حيوانات إضافية في نظام Cuprizone الغذائي لمدة 6 أسابيع ، ثم تم السماح لها بالتعافي على نظام غذائي طبيعي لمدة 1-6 أسابيع إضافية. تم الحفاظ على الحيوانات الضابطة في مختبر Purina المطحون.

قُتلت الحيوانات في أوقات مختلفة ، وتم تشريح الأدمغة (بما في ذلك المخيخ وجذع الدماغ). لتقييم معدلات تخليق الدهون ، تم حقن الفئران داخل الصفاق بـ 25 ملي مولاريتر مكعب / ساعة.2O والاحتفاظ بها لمدة 4 ساعات للسماح بإدراج التسمية قبل القتل (انظر Jurevics and Morell 1994). كما تم الحصول على عينات الدم عند القتل واستخدمت لتحضير مصل الدم لتحديد النشاط الإشعاعي المحدد لمياه الجسم (بافتراض 0.95 ميكرولتر من الماء / ميكرولتر من المصل). لتحليل الحمض النووي الريبي ، تم تشريح أدمغة مجموعات الحيوانات المتوازية ، وتجميدها على الفور على الجليد الجاف ، وتخزينها في درجة حرارة -80 درجة مئوية قبل التحليل.

استخلاص الدهون وفصلها وتقديرها

تم استخلاص الدهون بالتعديل (Benjamins وآخرون. 1976) من طريقة فولش وآخرون. (1957). كانت تحليلات مستويات السيريبروسيد والكوليسترول ومعدلات التوليف كما هو موصوف سابقًا (Jurevics and Morell 1994 Muse وآخرون. 2001). باختصار ، تمت تجزئة جزء من إجمالي جزء الدهون بالبنزويل وإزالة الكبريت (Nonaka and Kishimoto 1979) ثم تجزئة بواسطة HPLC على عمود سيليكا مزال بتدرج من الأيزوبروبانول في الهكسان. تم الكشف عن القمم التي تحتوي على هيدروكسي حمض البنزويلات وحمض دهني غير هيدروكسي وكبريتيدات عن طريق امتصاص الأشعة فوق البنفسجية عند 230 نانومتر وتم قياسها وفقًا للمعايير الأصلية (موسى وآخرون. 2001). تم حل الستيرولات من قسامة أخرى من الكسر الدهني الكلي بواسطة HPLC ذو المرحلة العكسية على عمود C18 ، باستخدام شطف متساوي مع الأسيتونيتريل / الأيزوبروبانول (97.5 / 2.5). تم الكشف عن الستيرولات عن طريق امتصاص الأشعة فوق البنفسجية عند 210 نانومتر وتم قياسها كميا مقابل المعايير الأصلية (Jurevics and Morell 1994).

قياس ل في الجسم الحي معدلات تخليق الدهون

حقن داخل الصفاق 3 ساعات2يتوازن O بسرعة مع البرك الخلوية وغيرها من مياه الجسم (Turley وآخرون. 1981 Spady and Dietschy 1983 Jurevics and Morell 1994). مع معرفة المسار الأيضي للتخليق الحيوي للدهون ، يمكن للمرء حساب عدد ذرات الهيدروجين الموجودة في المنتج النهائي المشتقة من الماء. في حالة cerebroside ، يكون هذا حوالي 33 ذرة هيدروجين لكل جزيء من cerebroside (Muse وآخرون. 2001). في حالة الكوليسترول ، تشير هذه الحسابات إلى دمج 22 ذرة هيدروجين من الماء في كل جزيء من الكوليسترول (Andersen and Dietschy 1979 Dietschy and Spady 1984 Belknap and Dietschy 1988). مع معرفة النشاط الإشعاعي المحدد لمياه الجسم (تم الحصول عليها من عينة مصل) ، يمكن إعادة حساب النشاط الإشعاعي الموجود في المخ أو الكوليسترول كمقدار مولاري من الدهون التي تم تصنيعها حديثًا منذ وقت حقن الماء المشع. الحساب الفعلي ضئيل للغاية ، حيث أن عدد مولات الدهون المركبة هو النشاط الإشعاعي المدمج في الدهون مقسومًا على 16.5 (cerebroside) أو 11 (كوليسترول) ضعف النشاط الإشعاعي المحدد لمياه الجسم.

فحص أنواع مرنا

تم عزل إجمالي الحمض النووي الريبي من نصف كل دماغ مقطوع متوسط ​​السهم. كما هو موضح سابقًا (Toews وآخرون. 1990) ، تم تجانس الأدمغة في 4 مل من محلول غوانيدينيوم أيزوثيوسيانات تم جمع الحمض النووي الريبي عن طريق الطرد المركزي من خلال 5.7 م من كلوريد السيزيوم وتنقيته أيضًا عن طريق ترسيب الإيثانول (Chirgwin وآخرون. 1979). تم فصل أنواع الحمض النووي الريبي وفقًا للوزن الجزيئي عند تغيير طبيعة المواد الهلامية التي تحتوي على الفورمالديهايد بنسبة 0.8 ٪ ثم نقلها إلى أغشية التنشيف من النايلون Zeta-Probe (مختبرات Bio-Rad ، ريتشموند ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية). تم تهجين المرشحات باستخدام 32 مجسًا (كدنا) يحمل علامة P تم تصنيعها باستخدام منهجية تفاعل البوليميراز المتسلسل مزدوج السلسلة (PCR) (Jansen and Ledley 1989) لتضخيم cDNA لبروتين المايلين الأساسي (MBP Roach وآخرون. 1983) ، أو منهجية PCR أحادية السلسلة (Bednarczuk وآخرون. 1991) لتضخيم (كدنا) لاختزال HMG-CoA (يوم وآخرون. 1989) وسيراميد جالاكتوزيل ترانسفيراز (CGT Stahl وآخرون. 1994). تم غسل المرشحات وقياس النشاط الإشعاعي في الحمض النووي الريبي باستخدام نظام التصوير الذاتي الإلكتروني Packard InstantImager. تم تعريض المرشحات أيضًا لفيلم الأشعة السينية للحصول على نمط مرئي لمستويات mRNA. للتحكم في التباين في معالجة العينات ، تم تطبيع القيم التي تم الحصول عليها إلى كمية الحمض النووي الريبي الريبوزومي في كل حارة ، كما تم فحصها باستخدام أليغنوكليوتيد 32 P-end-المسمى الخاص بتسلسل محدد في الوحدة الفرعية 28S (Hadjiolov وآخرون. 1984 ).

فحص مستويات بروتين MBP

تم إذابة بروتينات الدماغ بالكامل عن طريق التجانس في 1 ٪ كبريتات دوديسيل الصوديوم (SDS) متبوعًا بالغليان لمدة 15 دقيقة. تم التخلص من البقايا غير القابلة للذوبان التي تم الحصول عليها بعد الطرد المركزي وتم تحديد تركيز البروتين لجزء SDS القابل للذوبان باستخدام مجموعة فحص بروتين DC (BioRad ، Hercules ، CA ، الولايات المتحدة الأمريكية) وفقًا لتعليمات الشركة الصانعة. تم فصل قسامات من كل مستخلص يحتوي على ما يقرب من 3 ميكروغرام بروتين بواسطة الرحلان الكهربائي للهلام SDS – polyacrylamide على هلام تريسين متدرج مسبق الصب بنسبة 10-20٪ (Invitrogen ، كارلسباد ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية) ، ثم تم نقلها إلى أغشية النيتروسليلوز (Invitrogen). تم حظر الأغشية باستخدام حليب مجفف خالي من الدسم بنسبة 10٪ ثم تم تحضينها بجسم مضاد أحادي النسيلة ضد MBP (SMI 94 1: 5000 Sternberger Monoclonals ، Lutherville ، MD ، الولايات المتحدة الأمريكية) طوال الليل عند 4 درجات مئوية. بعد الغسيل ، تم تحضين الأغشية باستخدام مادة IgG المضادة للفأر المسمى بالبيروكسيداز (1: 2000 ، Vector Labs ، Burlingame ، CA ، الولايات المتحدة الأمريكية) لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة. تم تحديد مستويات 14.0 كيلو دالتون MBP من خلال التلألؤ الكيميائي المحسن باستخدام كواشف الكشف ECL + Plus (Amersham Pharmacia ، Piscataway ، NY ، الولايات المتحدة الأمريكية) ، و "Storm 840" Phosphoimager (الديناميكيات الجزيئية ، Sunnyvale ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية).

تحليل احصائي

تم إجراء تحليل عامل التباين الفردي (anova) على البيانات التي تم إنشاؤها في التجارب باستخدام التحكم والفئران التي تتغذى على cuprizone. اعتبرت الاختلافات كبيرة في ص & لتر 0.05. تم تحليل الفروق بين المجموعات في نقاط زمنية معينة بواسطة الطالب ر-الاختبار وتعتبر مختلفة بشكل كبير في ص & لتر 0.05.


المواد والأساليب

القبض على العصافير المنزلية وقياس فقدان الماء الجلدي

قمنا بحجز 12 عصفورًا منزليًا عابر سبيل L. في المركز الوطني لبحوث الحياة البرية (22 ° 15′ شمالاً ، 41 ° 50′ شرقاً) في الطائف بالمملكة العربية السعودية ، و 8 عصافير في كولومبوس (أوهايو ، الولايات المتحدة الأمريكية ، 40 ° 00′ شمالاً ، 83 ° 10′W) ، خلال الفترة من أكتوبر إلى نوفمبر 2003. كان متوسط ​​درجة الحرارة المحيطة وقت الدراسة 20.7 درجة مئوية في الطائف و 12.0 درجة مئوية في كولومبوس ، أوهايو. العصافير في مركز الأبحاث حيث تم التقاطها لديها المياه المتاحة باستمرار. قبل القياسات ، تم احتجاز العصافير في الأسر لمدة 1-2 أيام ، وتم إطعامها بمزيج من البذور وديدان الوجبة وصفار البيض ، وتم تزويدها بالماء بالشهرة الإعلانية.

قمنا بقياس فقدان الماء الجلدي (CWL) باستخدام نظام قياس التنفس بقناع التدفق المفتوح (Tieleman and Williams ، 2002). تم الإبلاغ عن بيانات CWL للعصافير الصحراوية والعصافير المنزلية في مكان آخر (انظر Muñoz-Garcia and Williams ، 2005).

استخراج الدهون المرتبطة تساهميًا

بعد قياس CWL ، قمنا بالتضحية بالطيور وإزالة جلدها. ثم قمنا بعزل الطبقة القرنية (SC) واستخلصنا الدهون بين الخلايا باتباع الإجراءات المنشورة (Haugen et al. ، 2003 Muñoz-Garcia and Williams ، 2005). تم تخزين SC في أنابيب اختبار زجاجية عند درجة حرارة -20 درجة مئوية تحت جو من النيتروجين.

للتأكد من أن جميع الدهون خارج الخلية قد تم استخلاصها ، قمنا بنقع SC لكل طائر لمدة ساعتين في الكلوروفورم: الميثانول 1: 2 (ت / ت). ثم قمنا بفحص مستخلصات الدهون باستخدام كروماتوغرافيا الطبقة الرقيقة (TLC). لم يتم الكشف عن أي شرائط دهنية في لوحاتنا ، مما يشير إلى إزالة جميع الدهون بين الخلايا.

بعد ذلك ، بحثنا عن الدهون المرتبطة تساهميًا (CBL) في الخلايا القرنية عن طريق غمر SC في 2 مل من 1 مول لتر -1 هيدروكسيد الصوديوم في 90٪ ميثانول عند 60 درجة مئوية لمدة ساعتين (Wertz and Downing ، 1987). يكسر هذا التحلل المائي القلوي الخفيف روابط الإستر للدهون المرتبطة بربط استر بالبروتينات (Wertz and Downing ، 1987). ثم قمنا بتعديل الرقم الهيدروجيني إلى 6 بإضافة 3 مول لتر -1 حمض الهيدروكلوريك ، وإضافة 2.5 مل من الكلوروفورم. تم بعد ذلك تمرير المحلول عبر مرشح زجاجي مُلبد ، وطرده عند 3000 ز لمدة 15 دقيقة. بعد بضع دقائق ، ينقسم المحلول إلى طبقتين ، طبقة مائية وطبقة عضوية تحتوي على أي دهون. تم غسل الطور العضوي مرتين بالماء المقطر لإزالة الملوثات. تم خلط المرحلة المائية مع 1 مل من الكلوروفورم لاستخراج أي دهون قد تكون في هذه المرحلة ، وطردها حديثًا عند 3000 ز لمدة 10 دقائق. قمنا بدمج الكسور العضوية ، وأزلنا أي جزيئات صغيرة متبقية عن طريق تمرير المحلول عبر مرشح PTFE ، بحجم مسام 0.45 ميكرومتر (Millex ، Millipore Corp. ، Bedford ، MA ، الولايات المتحدة الأمريكية). قمنا بتجفيف الفلاتر بتيار من النيتروجين وتخزينها في درجة حرارة -20 درجة مئوية. قبل تحليل الدهون ، تم إعادة تكوين المستخلصات في 50 ميكرولتر من الكلوروفورم: ميثانول (2: 1 ، حجم / حجم) يحتوي على 50 مجم لتر -1 من مضادات الأكسدة بيوتيلات هيدروكسي تولين ، BHT.

تحديد وتقدير الدهون المرتبطة تساهميًا

قمنا باختبار CBL في الطبقة القرنية باستخدام كروماتوجرافيا الطبقة الرقيقة التحليلية (TLC) على ألواح زجاجية 20 سم × 20 سم مغطاة بحمض السيليك (بسمك 0.25 مم ، Adsorbosil-Plus 1 ، Alltech ، Deerfield ، IL ، الولايات المتحدة الأمريكية). تم تحضير الألواح عن طريق تطويرها بالكلوروفورم: الميثانول (2: 1 ، حجم / حجم) إلى الأعلى وتجفيفها بالهواء وتنشيطها لمدة 30 دقيقة عند 110 درجة مئوية. ثم قمنا بتقسيم كل لوحة إلى ممرات بعرض 10 مم. أعددنا معايير بتركيزات معروفة من سيراميدات الأحماض الدهنية غير الهيدروكسية والجالاكتوسيريبروسيدات والكوليسترول ومزيج من الأحماض الدهنية الحرة ، وجميعها تم شراؤها من سيجما (سانت لويس ، ميزوري ، الولايات المتحدة الأمريكية). تراوح تركيز المعايير من 0.3 إلى 10 ميكروغرام -1 ، وهو النطاق الذي امتد تركيز الدهون في مستخلصاتنا. قمنا بتحميل 5 ميكرولتر من كل من المعايير والعينات على لوحات ، من نسختين ، باستخدام حقنة هاميلتون ذات رأس تفلون. تم فصل المزيد من الدهون القطبية ، مثل السيراميدات والمخيات ، باستخدام تطوير الكلوروفورم: الميثانول: الماء (40: 10: 1 ، ت / ت / ت) إلى 8 سم من القاع ، متبوعًا بتطورين مع الكلوروفورم: الميثانول: حمض الأسيتيك (190: 9: 1 ، ت / ت / ت) إلى الأعلى ، وتطور نهائي مع الهكسان: ثنائي إيثيل إيثر: حمض أسيتيك (70: 30: 1 ، ت / ت / ت) إلى النصف. بالنسبة للدهون المحايدة ، مثل الأحماض الدهنية الحرة ، قمنا بتطوير ألواح تحتوي على الهكسان في الأعلى ، متبوعًا بتطور مع التولوين إلى الأعلى ، وتطور نهائي مع الهكسان: ثنائي إيثيل الأثير: حمض الأسيتيك (70: 30: 1 ، ت / ت / ت) إلى النصف. بعد التطوير ، قمنا برش الألواح بمحلول مكون من 3٪ أسيتات نحاسي في 8٪ حمض فوسفوريك ، ووضعناها على ألواح تسخين من الألومنيوم ورفعنا درجة الحرارة ببطء إلى 160 درجة مئوية خلال فترة 30 دقيقة. تفحم هذا الإجراء الدهون ، مما سمح لها بالتخيل.

هاجرت بعض الدهون في مستخلصاتنا على ألواح TLC بمعدل يتوافق مع معايير cerebroside. للتأكد من أن هذه الدهون عبارة عن مبيدات مخية ، اختبرنا هذه النطاقات بحثًا عن وجود السكريات عن طريق رش الألواح بمزيج من 100 جم من 2،4-دينيتروفينيل هيدرازين في 100 مل من حمض الفوسفوريك / الإيثانول (1: 1 ، ت / ت). ثم قمنا بتسخين اللوحة عند 110 درجة مئوية لمدة 10 دقائق. في وجود السكريات ، ينتج عن 2،4-dinitrophenylhydrazine لون برتقالي (Wall ، 2005).

استخدمنا أيضًا كروماتوغرافيا الطبقة الرقيقة عالية الأداء (HPTLC) للبحث عن فئات من المبيدات المرتبطة تساهميًا في SC لأن هذه الطريقة قد توفر دقة أكبر لفئات cerebroside. في هذا الإجراء ، استخدمنا ألواح 10 × 20 سم مغطاة بطبقة بسمك 0.20 مم من هلام السيليكا (Si 60 ، Merck ، Darmstadt ، ألمانيا). استخدمنا نفس البروتوكول الخاص بـ TLC التحليلي ، باستثناء أننا قمنا بتحميل 3 ميكرولتر من خلاصة الدهون والمعايير على اللوحات. تم تطوير الألواح بالكلوروفورم: الميثانول: الماء (40: 10: 1 ، حجم / حجم / حجم) إلى أعلى اللوحة وشرائط الدهون الموضحة أعلاه.

لتقدير تركيزات فئات CBL ، قمنا بمسح الألواح المكربنة باستخدام ماسح ضوئي Hewlett Packard ، وقياس كميات الدهون باستخدام برنامج TN Image (Nelson ، 2003). يشير التحقق من صحة أساليبنا إلى أنه يمكننا قياس كميات الدهون بشكل روتيني في حدود ± 2 ٪ (Muñoz-Garcia and Williams ، 2005).


الدهون أسئلة وأجوبة متعددة الخيارات

12. أي مما يلي هو سمة من سمات كل من ثلاثي الجلسرين والجليسيروفوسفوليبيد؟

  1. كلاهما يحتوي على مجموعات كربوكسيل وهو ثنائي الأمفيبات
  2. كلاهما يحتوي على أحماض دهنية وقابل للتصبن.
  3. كلاهما يحتوي على روابط الجلسرين والأثير.
  4. يمكن أن يشحن كلاهما سالبًا عند درجة الحموضة الخلوية.

13. أي مما يلي هو سمة من سمات كل من الشمع والتربينات؟

  1. كلاهما يمكن أن يحتوي على كحول أميني.
  2. كلاهما يمكن أن يحتوي على حمض دهني.
  3. كلاهما يمكن أن يكون غير قابل للتصبن.
  4. كلاهما يمكن أن يحتوي على الأكسجين.

14. أي من الجزيئات التالية هو حمض دهني نموذجي؟

  1. جزيء يحتوي على عدد زوجي من ذرات الكربون في سلسلة متفرعة.
  2. حمض ثنائي الكربوكسيل ثنائي الكربوكسيل مع روابط مزدوجة غير مترابطة.
  3. جزيء له رابطة ثنائية رابطة الدول المستقلة في سلسلة كربون خطية.
  4. يتفاعل الهيدروكربون القطبي مع هيدروكسيد الصوديوم لتكوين ملح.

15. ما الخاصية التي يمكن أن يتقاسمها هذا الدهن والتربين؟

  1. كلاهما يمكن أن يحتوي على الأيزوبرين.
  2. كلاهما يمكن أن يشكل micelles.
  3. يمكن أن يحتوي كلاهما على حمض دهني مشبع.
  4. كلاهما يمكن أن يكون جزيئات كارهة للماء.

16. ما الخاصية التي يشترك فيها هذا الدهن مع ثلاثي الجلسرين نموذجي؟

  1. كلاهما يحتوي على رابطة الأثير.
  2. كلاهما يحتوي على كحول طويل السلسلة.
  3. كلاهما برمائي.
  4. كلاهما قابل للتصبن.

17. أي نوع من الغشاء الدهني يحتوي على قليل السكاريد الحمضي؟

18. أي نوع من الغشاء الدهني يمكن أن يحتوي على السيرين؟

19. ما هي خصائص الستيرويد الذي هو جزء من غشاء الخلية؟

  1. سوف تحتوي على مجموعة الهيدروكسيل.
  2. سوف يحتوي على أربع حلقات عطرية.
  3. سوف تحتوي على مادة الكولين.
  4. سوف تحتوي على رابطة أميد.

20. ما هي خصائص جميع أنواع الدهون الرئيسية في هذا الغشاء؟


يتم التعبير عن مستضدات الكربوهيدرات من سلسلة Globo بأشكال مختلفة على الخلايا المشتقة من سرطان المسخي البشري والفئران

تمت مقارنة الجليكوليبيدات لخط الخلايا المشتقة من سرطان المسخ البشري NCCIT مع تلك الموجودة في 5 خطوط خلوية مشتقة من الورم المسخي. تم تحديد مستضدات Glycolipid عن طريق التألق المناعي لسطح الخلية والتلوين المناعي عالي الأداء للطبقة الرقيقة (HPTLC) مع لوحة من الأجسام المضادة أحادية النسيلة المضادة للكربوهيدرات. احتوت الخلايا السرطانية الجنينية NCCIT البشرية (EC) على سلسلة globo الممتدة من glycolipids Gb5 (galactosyl globoside) و GL7 (sialyl galactosyl globoside) المعترف بها بواسطة الأجسام المضادة لمستضدات جنينية محددة المرحلة 3 و 4 (SSEA-3 و -4). لم يتم اكتشاف SSEA-4 عن طريق التألق المناعي على سطح أي من 5 خطوط الخلايا المشتقة من الورم المسخي الفئران التي تم فحصها ، ومع ذلك ، تم اكتشاف SSEA-3 على سطح خطوط الخلايا الفأرية التي تشبه الأديم الباطن البدائي (JC44 ، NF-PE) والأديم الظاهر ( E6496D). كشف تحليل HPTLC عن كمية كبيرة من الجلوبوزيد (Gb4) في هذه الخلايا المتمايزة ، والتي قد تكون مسؤولة عن وضع العلامات عليها باستخدام الجسم المضاد لـ SSEA-3. تم اكتشاف جليكوليبيدات Globo-series أيضًا في خلايا المورين EC ومع ذلك ، لوحظت اختلافات بين سطري الخلية اللذين تم فحصهما. احتوت خلايا F9 بشكل أساسي على Gb4 و Forssman glycolipid ، بينما احتوت خلايا NF-1 على كميات صغيرة فقط من Gb4 وتفتقر إلى Forssman glycolipid تمامًا. تشير نتائجنا ، إلى جانب التوزيع المعروف لمستضد فورسمان في جنين الفئران بمرحلة أسطوانة البيض ، إلى أن خلايا EC الفأرية F9 و NF-1 هي نسخ متماثلة للخلايا في مراحل مختلفة من تطور الأديم الظاهر الجنيني. تم فحص جليكوليبيدات أجنة الفئران العادية للمقارنة. كان كل من Gb4 و Forssman glycolipid موجودًا في كل من الأنسجة الجنينية والأنسجة الجنينية ، في حين اقتصرت Gb5 و GL7 على كيس الصفار الحشوي والمشيمة. تُظهر نتائجنا أن الخلايا المشتقة من سرطان المسخ البشري والفأري تصنع كلاهما جليكوليبيدات ممتدة من سلسلة globo ، ومع ذلك ، فإن استطالة سلسلة oligosaccharide تأخذ مسارات مختلفة في النوعين. تعكس هذه الاختلافات أنماط الارتباط بالجليكوزيل المرتبطة بالأنواع والخاصة بنوع الخلية.


ما هي الشحميات السفينغولية؟

يشار إلى نوع من الدهون التي تربط أغشية الخلايا باسم سفينجوليبيدات. وهي تعتمد على كحول أمين الكربون ثمانية عشر. بعبارات بسيطة ، تحتوي السفينجوليبيدات على كحول أميني أليفاتي عضوي سفينجوزين أو أي مادة تشبه السفينجوزين. تحتوي جميع الأعضاء التي تنتمي إلى المجموعة السفينجوليبيدية على سكر معقد أو بسيط مرتبط بالكربون الأول لمجموعة الكحول (C1). العضو الذي ينحرف عن هذا الهيكل المشترك هو sphingomyelin. يتكون هذا الجزيء من مجموعة فسفوريل كولين وهي نفس مجموعة الرأس القطبية الموجودة في فوسفاتيديل كولين.

نظرًا لأن السفينجوميلين لا يحتوي على جزء السكر ، فإنه يعتبر نظيرًا لفسفاتيديل كولين. بالإضافة إلى السكر ، تحتوي جميع الشحميات السفينجولية على حمض دهني مرتبط بالمجموعة الأمينية لجزيء السفينجوزين. السفينجوميلين هو السفينجوليبيد الوحيد الذي يعتبر من الفوسفوليبيد الذي يعمل كمكون رئيسي للأغشية البيولوجية.

الشكل 02: هيكل Sphingolipds

السفينجوميلين هو الفوسفور الوحيد المحتوي على السفينجوليبيد الموجود في أشكال وفيرة في الأنسجة العصبية. يوجد سفينجوميلين أيضًا في الدم. داء السفينجوليبيدوسيس و الحثل الشحمي السفينجولي هما حالتان مرضيتان تم تطويرهما بسبب التمثيل الغذائي الشحمي السفينجوليبيد غير الطبيعي. بسبب تراكم الشحميات السفينغولية في الدماغ ، يمكن أن يكون هناك تطور لمرض نادر يسمى حالة مرض تاي ساكس.


زيادة تركيز سيريبروسيد في البلازما وكريات الدم الحمراء في مرض جوشر: فروق ذات دلالة إحصائية بين النوع الأول والنوع الثالث

تم تطوير طريقة لتقدير المبيدات الدماغية في 1 مل من البلازما أو 1 مل من كريات الدم الحمراء المعبأة. 90٪ على الأقل من جزء سيريبروسيد يتألف من الجلوكوزيل سيراميد. في كريات الدم الحمراء ، لم يتم تحديد أي شيء سوى الجلوكوزيلسيراميد. تم تطبيق هذه الطريقة على عينات البلازما من 25 عنصر تحكم ، و 34 حاملات ملزمة من نوع Gaucher Type III ، و 16 مريضًا من نوع Gaucher Type III ، و 7 مرضى من نوع Gaucher من النوع I و 7 مرضى مصابين بسرطان الدم النقوي أو اللمفاوي ، بالإضافة إلى عينات كرات الدم الحمراء من 20 مجموعة تحكم ، و 6 Gaucher الناقلات الملزمة من النوع الثالث ، و 16 مريضًا من نوع جوشر من النوع الثالث و 6 مرضى من النوع الأول. كان تركيز البلازما cerebroside 11.4 & plusmn4.2 (SD) في الضوابط ، 11.8 & plusmn 2.6 في ناقلات Gaucher Type III ، 30.4 & plusmn 7.7 في مرضى Gaucher Type III و 21.8 & plusmn 6.7 & mumol / l في مرضى Gaucher Type I. زاد مرضى جوشر بشكل ملحوظ (p & lt0.001) من قيم cerebroside في البلازما ، بينما زاد تركيز cerebroside في البلازما بشكل طفيف فقط ، 14.7 & plusmn 5.7 & mumol / l. كانت القيم المقابلة في بيليه كرات الدم الحمراء المعبأة هي: Controls 2.9 & plusmn 0.7 ، ناقلات Gaucher Type III 2.9 & plusmn 0.7 ، مرضى Gaucher Type III 9.2 & plusmn 2.4 ومرضى Gaucher Type I 6.5 & plusmn 2.7 & mumol / l. كان تركيز الفسفوليبيد هو نفسه في جميع مجموعات جوشر الثلاث ولم يكن مختلفًا بشكل كبير عن ذلك في مجموعة الضوابط.

مجلة

نشرت: 1 نوفمبر 1982

الكلمات الدالة: داء سيريبروسيد جوشر النوع الأول والثالث (النوع نوربوتنيان) الجلوكوزيلسيراميد في البلازما وخلايا الدم الحمراء متغايرة الزيجوت مرضى اللوكيميا استئصال الطحال


5 أنواع مهمة من الدهون القابلة للتصبن (مع رسم بياني)

الدهون المحايدة أو الدهون الثلاثية أو الجلسرين الثلاثي هي استرات الجلسرين وثلاثة أحماض دهنية ولها الصيغة العامة الموضحة في الشكل 6-2.

في هذه الصيغة ، قد يكون n و n & # 8217 و n & # 8221 نفس الرقم أو أرقامًا مختلفة.

عادة ، يكون الحمض الدهني الذي تم أستره إلى ذرة الكربون الأولى من الجلسرين (أي الكربون العلوي في الشكل 6-2) مشبعًا ، في حين أن الحمض الدهني المُستَقر إلى ذرة الكربون الوسطى غير مشبع.

تم العثور على الأحماض الدهنية المشبعة أو غير المشبعة في موضع الكربون الثالث. على عكس الأحماض الدهنية ، فإن الدهون المحايدة ليست قطبية تمامًا. تمثل الدهون المحايدة ، التي غالبًا ما تترسب في الخلايا كمصادر محتملة للطاقة الكيميائية ، النوع الرئيسي من الدهون المخزنة التي تحدث على شكل قطرات في السيتوبلازم ومعظم الدهون التي يتم استعادتها في المرحلة القابلة للذوبان أو العصارة الخلوية للخلايا المعطلة تأخذ هذا الشكل . تظهر قطرات الدهون المخزنة بكثرة في خلايا العضلات بوضوح في الشكل 6-3.

2. الجلسروفوسفاتيد:

الأعضاء الرئيسية لهذه المجموعة من الدهون هي مشتقات حمض الفوسفاتيدك. حمض الفوسفاتيديك مشابه للدهون الثلاثية فيما عدا أنه يتم استبدال أحد الأحماض الدهنية بمجموعة الفوسفات (الشكل 6-4). يتواجد حمض الفوسفاتيدك ومشتقاته في أغشية البلازما ، حيث يلعبون دورًا نشطًا في وظيفة الغشاء بالإضافة إلى كونهم بمثابة مكونات هيكلية رئيسية (الشكل 6-3).

أكثر مشتقات حمض الفوسفاتيديك شيوعًا هي فوسفاتيديل الكولين (المعروف أيضًا باسم ليسيثين) ، فوسفاتيديل إيثانولامين (المعروف أيضًا باسم سيفالين) ، فوسفاتيديل سيرين ، وفوسفاتيديل إينوزيتول (الشكل 6-5). يسمح الدوران الحر حول الروابط الفردية للعمود الفقري للجليسرول للفوسفات المحبة للماء ومشتقاته بالابتعاد عن الجزء الكارهة للماء ، كما هو موضح في الصيغ الهيكلية بالشكل 6-5.

وبالتالي ، فإن الجلسيروفوسفاتيدات (والدهون الأخرى التي نوقشت أدناه) هي أمفيباثيك ، أي أن أحد طرفي الجزيء كاره للماء بشدة (أي النهاية التي تحتوي على سلاسل الهيدروكربون) بينما الطرف الآخر محبة للماء بسبب الطبيعة المشحونة لمجموعة الفوسفات المنفصلة وغيرها من البدائل. في وجود الماء ، يمكن أن يتصرف الجلسرين فوسفاتيد بطرق مختلفة (الشكل 6-6). على سبيل المثال ، يمكن أن تشكل طبقات أحادية (أي طبقات جزيئية أحادية) على الماء مع نهاياتها القطبية بارزة في الماء ونهاياتها الكارهة للماء موجهة بعيدًا عن الماء.

أيضًا ، مثل الأحماض الدهنية ، يمكن أن يشكل الجلسرين فوسفاتيد مذيلات مع الأطراف القطبية للجزيئات عند سطح micelle & # 8217s وسلاسل الهيدروكربونات البارزة نحو المركز. ومع ذلك ، فإن ميل الجلسيروفوسفاتيد إلى تكوين طبقات ثنائية أو صفائح ثنائية الجزيئية له أهمية خاصة (الشكل 6-6).

Bilayers formed predominantly from glycerophosphatides are believed to be fundamental to the structure of the plasma membrane, the membranes of the endoplasmic reticulum, and the membranes of vesicular organelles.

Hydrophobic interactions between the tails of the glycerophosphatides are the most important forces promoting the formation of bilayers. The assembly of a bilayer is spontaneous as long as there is adequate lipid present the spontaneous nature of bilayer for­mation is reminiscent of the automatic folding of pro­tein molecules that takes place due to the interaction of hydrophobic amino acid side chains.

When aqueous suspensions of glycero­phosphatides are subjected to rapid agitation using ul­trasound (i.e., insonation), the lipid disperses in the water and forms liposomes or lipid vesicles (Fig. 6- 7). These liposomes consist of a spherical bilayer of the glycerophosphatide molecules enclosing a small vol­ume of the aqueous medium. If small molecules and ions are initially dissolved in the water, some of these will be enclosed by the liposomes.

The ability of differ­ent substances inside or outside the liposomes to tra­verse the bilayer can be studied experimentally. When this is done, it is found that liposomes exhibit many of the permeability properties of natural cellular mem­branes.

In recent years there has been considerable interest in using liposomes as vectors for the transfer of drugs, proteins, nucleic acids, ions, and other molecules into cells. The mechanism is illustrated in Figure 6-8. Li­posomes are either incubated or formed de novo in aqueous solutions of the substance to be transferred and are then washed free of un-encapsulated material. When mixed with cells in vitro or introduced in vivo (e.g., through intravascular or intra-peritoneal injec­tion), the liposomes fuse with the plasma membranes of the target cells.

The contents of the liposome may enter the cell via either of several routes:

(1) Following fusion, the liposome’s contents may be emptied into the cytosol

(2) The entire liposome may be endocytosed and degraded, thereby releasing the entrained substances in the cell and/or

(3) The liposomes may undergo degradation extracellularly, creating a local­ized high concentration of material that may then be incorporated by the cell. The capability to produce li­posomes that differentially bind to the surfaces of spe­cific types of cells and tissues holds great therapeutic promise, for it would make it possible to deliver spe­cific chemical agents to specific tissues.

Plasmalogens are a special class of lipids especially abundant in the membranes of nerve and muscle cells and also characteristic of cancer cells. A plasmalogen is similar to a glycerophosphatide except that the fatty acid at the number 1 position of the glycerol is replaced by unsaturated ether (Fig. 6-9).

Sphingolipids are derivatives of sphingosine, an amino alcohol possessing a long, unsaturated hydro­carbon chain (Fig. 6-10a). The myelin sheath sur­rounding many nerve cells is particularly rich in the sphingolipid sphingomyelin (Fig. 6-10b). In sphingo­myelin, the amino group of the sphingosine skeleton is linked to a fatty acid and the hydroxyl group is esterified to phosphorylcholine.

The outer surface of the plasma membrane of most cells is studded with short chains of sugars. These sugars are either parts of glycoproteins or they are attached to membrane lipids, thereby forming glycolipids. Glycolipids in the plasma mem­brane play vital roles in immunity, blood group speci­ficity, and cell-cell recognition.

The carbohydrates that are found in glycolipids vary from individual mono saccharides (e.g., glucose and galactose) to short, branched or unbranched oligosaccharides. The lipid portion of a glycolipid is similar to sphingosine with the amino group of the sphingosine skeleton acylated by a fatty acid (as in sphingomyelin) and the hy­droxyl group associated with the carbohydrate.

The simplest glycolipids are the cerebrosides, which, as their name suggests, are abundant in brain tissue, where they are found in the myelin sheaths and may account for as much as 20% of the sheath’s dry weight. Small amounts of cerebrosides are also found in kidney, liver, and spleen cells. Usually, the sugar of a cerebroside is either glucose or galactose (Fig. 6- 11).

In the gangliosides (also associated with nerve tissue), the carbohydrate portion of the molecule con­sists of a chain of sugar molecules usually including glucose, galactose, and neuraminic acid. One particu­lar ganglioside, called Gم 2, may accumulate in the lysosomes of brain cells because of a genetic defi­ciency that result in the failure of the cells to produce a lysosomal enzyme that degrades this ganglioside. The condition is known as Tay-Sachs disease and fre­quently leads to paralysis, blindness, and retarded de­velopment.


A carbohydrate-carbohydrate interaction between galactosylceramide-containing liposomes and cerebroside sulfate-containing liposomes: Dependence on the glycolipid ceramide composition

Article Views are the COUNTER-compliant sum of full text article downloads since November 2008 (both PDF and HTML) across all institutions and individuals. These metrics are regularly updated to reflect usage leading up to the last few days.

Citations are the number of other articles citing this article, calculated by Crossref and updated daily. Find more information about Crossref citation counts.

The Altmetric Attention Score is a quantitative measure of the attention that a research article has received online. Clicking on the donut icon will load a page at altmetric.com with additional details about the score and the social media presence for the given article. Find more information on the Altmetric Attention Score and how the score is calculated.

ملحوظة: In lieu of an abstract, this is the article's first page.


شاهد الفيديو: الليسيثين. الدكتور محمد فائد (يوليو 2022).


تعليقات:

  1. Mezitilar

    بالتأكيد ، إنه على حق

  2. Davidsone

    لا أعرف أي شيء عنها

  3. Toru

    أنا أتفق معك. في ذلك شيء ما.الآن أصبح كل شيء واضحًا ، وأنا أقدر المساعدة في هذا الأمر.

  4. Amaud

    Bravo, as a sentence ..., brilliant idea



اكتب رسالة