معلومة

كيف يساعد البروتين P (اللحاء) في سد الجروح؟

كيف يساعد البروتين P (اللحاء) في سد الجروح؟


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

بينما كنت أقرأ كتابًا ، وجدت أن "البروتينات P في عناصر غربال اللحاء تساعد في سد الجروح جنبًا إلى جنب مع الكالوز".

فكيف يقوم بروتين p بهذا ، علاوة على ذلك ، كيف يمكنه الوصول إلى أجزاء أخرى من جسم النبات من أجل سد الجروح؟


تفاعل نسيج الخشب واللحاء أثناء النضح وانسداد الجرح القرع الأقصى

كان جمع إفرازات القرعيات من أعناق مقطوعة أداة قوية لاكتساب المعرفة بتكوين عصارة اللحاء دون فكرة كاملة عن آلية النضح المعقدة. ذكرت عدد قليل فقط من المنشورات صراحة أنه تم جمع الإفرازات من الجانب القاعدي للقطع ، والذي ينضح بغزارة أكثر من الجانب القمي. هذا أمر مثير للدهشة لأن النضح فقط من الجانب القمي من المفترض أن يكون مدفوعًا بتدرجات ضغط اللحاء. تكوين الكربوهيدرات وقيم الأس الهيدروجيني على جانبي الجرح متساوية ، بينما يكون تركيز البروتين أعلى في الجانب الأساسي. على ما يبدو ، فإن النضح أكثر تعقيدًا بكثير من مجرد توصيل عصارة اللحاء. يشار إلى تورط النسيج الخشبي بتركيزات بروتين أقل بعد التخلص من ضغط الجذر. علاوة على ذلك ، تم امتصاص الصبغة في أوعية نسيج الخشب بسبب استرخاء الضغط السلبي بعد القطع. يزيد تدفق المياه الجانبي من الأوعية من تمزق الخلايا المحيطة بما في ذلك عناصر الغربال. في نفس الوقت ، تؤدي البروتينات الجدارية المنفصلة (PP1 / PP2) إلى انسداد ألواح الغربال وتغطية سطح الجرح. إذا كان ضغط الجذر قويًا بدرجة كافية ، فيمكن جمع نسغ نسيج الخشب النقي بعد إزالة سدادة الانسداد على سطح الجرح. توفر النتائج الحالية آلية لنضح النسغ في القرع الأقصى، حيث يتم دمج مساهمة ماء نسيج الخشب.


بيولوجيا الخلية النباتية

شو وانغ. جونغ يون لي ، طرق في بيولوجيا الخلية ، 2020

2.4 تلطيخ الكالوز

لا يُبلغ تلطيخ الكالوز في حد ذاته عن نفاذية plasmodesmal ولكنه طريقة تكميلية مفيدة للإبلاغ عما إذا كانت التغييرات في نفاذية plasmodesmal مرتبطة بالتغيرات في مستويات تراكم الكالوز. يمكن الكشف عن مستويات الكالوز في plasmodesmata باستخدام صبغة الأنيلين الأزرق ، أو باستخدام نهج التألق المناعي أو وضع العلامات الذهبية ، ثم قياسها باستخدام المجهر الإلكتروني متحد البؤر أو ناقل الحركة الإلكتروني. يمكن إجراء قياس الكالو ذو الأساس الأزرق الأنيلين في كل من الأنسجة الحية والثابتة ، والإجراء بسيط نسبيًا. ومع ذلك ، فإن الصبغة معرضة بشدة لتبييض الصور ، وبالتالي يجب إجراء التصوير بحذر شديد.


Cambium: الأصل والمدة والوظيفة (مع الرسوم البيانية) | علم النبات

دعونا نتعرف على Cambium. بعد قراءة هذا المقال سوف تتعرف على: 1. أصل الكامبيوم 2. Cambium الحاجز و بين الحزم 3. المدة 4. الوظائف 5. الهيكل 6. قسم الخلية 7. سماكة في النخيل.

أصل الكامبيوم:

يتم بناء الهيكل الأساسي للأوعية الدموية من خلال نضوج خلايا خيوط البروكامبيوم لتشكيل نسيج الخشب واللحاء. النباتات التي لا تمتلك نموًا ثانويًا ، تنضج جميع خلايا خيوط البروكامبيوم وتتطور إلى أنسجة وعائية.

في النبات الذي لديه نمو ثانوي لاحقًا ، يظل جزء من حبلا البروكامبيوم مرستيميًا ويؤدي إلى ظهور الكامبيوم السليم. في الجذور ، يختلف تكوين الكامبيوم عن ذلك الموجود في السيقان بسبب الترتيب الشعاعي لخيوط الخشب واللحاء المتناوبة.

هنا ينشأ الكامبيوم كشرائح منفصلة من الأنسجة في خيوط البروكامبيوم داخل مجموعات اللحاء الأولي. في وقت لاحق ، يتم ربط شرائط الكامبيوم من خلال امتدادها الجانبي في الدراجة الهوائية مقابل أشعة نسيج الخشب الأساسي. يكون تكوين الأنسجة الثانوية أسرع تحت مجموعات اللحاء بحيث يشكل الكامبيوم ، كما يظهر في المقطع العرضي للجذور القديمة ، دائرة.

Cambium الحاجز و بين الحزم:

في السيقان ، عادةً ما يوجد البروكامبيوم الأول الذي يتطور من البرومريستيم في شكل خيوط معزولة. في بعض النباتات ، سرعان ما تتحد هذه الخيوط المكونة لأول مرة ، متحدة بشكل جانبي بواسطة خيوط إضافية مماثلة تتشكل فيما بينها وبواسطة الامتداد الجانبي للخيوط المكونة لأول مرة.

أثناء التطوير الإضافي ، تؤدي هذه الأسطوانة المحورية إلى ظهور أسطوانة من الأنسجة الوعائية الأولية (نسيج الخشب واللحاء) والكامبيوم. في وقت لاحق ، يتم تكوين أسطوانة من أنسجة الأوعية الدموية الثانوية التي تنشأ في خيوط كما تفعل الأسطوانة الأولية. في Ranunculus وبعض النباتات العشبية الأخرى ، لا تلتحم خيوط البروكامبيوم والأنسجة الوعائية الأولية بشكل جانبي ولكنها تظل كخيوط منفصلة.

في كثير من الأحيان في السيقان العشبية ، يمتد الكامبيوم بشكل جانبي عبر المساحات المتداخلة حتى يتم تكوين أسطوانة كاملة. وحيث يحدث هذا الامتداد ، ينشأ الكامبيوم من خلايا مرستمية بين الحزم مشتقة من النسيج الإنشائي القمي.

تُعرف شرائط الكامبيوم التي تنشأ داخل الحزم الجانبية باسم الكامبيوم الحزم ، وتُعرف الشرائط الكامبيوم الموجودة بين الحزم باسم الكامبيوم بين الحزم.

مدة الكامبيوم:

تختلف مدة الحياة الوظيفية للكامبيوم اختلافًا كبيرًا باختلاف الأنواع وأيضًا في أجزاء مختلفة من نفس النبات. في نبات خشبي معمر يعيش كامبيوم الجذع الرئيسي من وقت تكوينه حتى موت النبات.

يمكن فقط من خلال النشاط المستمر للكامبيوم في إنتاج نسيج الخشب واللحاء الجديد أن تحافظ هذه النباتات على وجودها. في الأوراق والنورات والأجزاء المتساقطة الأخرى ، تكون الحياة الوظيفية للكامبيوم قصيرة. هنا تنضج جميع خلايا الكامبيوم كأنسجة وعائية. تم العثور على نسيج الخشب الثانوي مباشرة على اللحاء الثانوي في هذه الحزم.

وظيفة الكامبيوم:

يتكون النسيج الإنشائي الذي يشكل الأنسجة الثانوية من ورقة غير متجانسة من الأحرف الأولى التي تشكل خلايا جديدة عادة على كلا الجانبين. يشكل الكامبيوم نسيجًا داخليًا ولحاء خارجيًا. يشكل التقسيم العرضي للخلية الكامبية خليتين ابنتيتين متطابقتين على ما يبدو.

تظل إحدى الخلايا البنتية بارزة ، أي الخلية المحببة المستمرة ، والأخرى تصبح خلية أم من نسيج الخشب أو خلية أم لحاء اعتمادًا على موقعها داخليًا أو خارجيًا للخلية الأولية. تنقسم خلية الكامبيوم بشكل مستمر بطريقة مماثلة ، حيث تظل خلية ابنة واحدة دائمًا من الخلايا البائسة ، وهي خلية الكامبيوم ، بينما تصبح الخلية الأخرى إما نسيجًا خشبيًا أو خلية أم لحاء.

ربما لا يوجد تناوب محدد ولفترات وجيزة يتكون نوع واحد فقط من الأنسجة. تنقسم خلايا الكامبيوم المجاورة في نفس الوقت تقريبًا ، وتنتمي الخلايا الوليدة إلى نفس النسيج. بهذه الطريقة ، يتم الحفاظ على الاستمرارية العرضية للكامبيوم.

هيكل الكامبيوم:

هناك نوعان من المفاهيم العامة للكامبيوم كطبقة بدء:

1. أنه يتكون من طبقة أحادية من الأحرف الأولى الدائمة مع مشتقات قد تنقسم عدة مرات وتتحول قريبًا إلى نسيج دائم

2. أن هناك عدة صفوف من الخلايا البادئة التي تشكل منطقة كامبيوم ، حيث يستمر عدد قليل من الصفوف الفردية كطبقات مكونة للخلايا لبعض الوقت. خلال فترات النمو ، تنضج الخلايا باستمرار على جانبي الكامبيوم ، يصبح من الواضح تمامًا أن طبقة واحدة فقط من الخلايا يمكن أن يكون لها وجود دائم مثل الكامبيوم.

الطبقات الأخرى ، إن وجدت ، تعمل بشكل مؤقت فقط وتتحول بالكامل إلى خلايا دائمة. بالمعنى الدقيق للكلمة ، تشكل الأحرف الأولى فقط الكامبيوم ، ولكن كثيرًا ما يتم استخدام المصطلح للإشارة إلى المنطقة الكامبيوم ، لأنه من الصعب التمييز بين الأحرف الأولى من مشتقاتها الحديثة.

التركيب الخلوي للكامبيوم:

هناك نوعان مختلفان من خلايا الكامبيوم:

1. الأحرف الأولى من اسم الشعاع ، والتي تكون أكثر أو أقل متساوية القياس وتؤدي إلى ظهور أشعة وعائية و

2. الأحرف الأولى مغزلي ، وهي الخلايا المستدقة المستطيلة التي تنقسم لتشكل جميع خلايا النظام الرأسي.

تكون الخلايا الكامبية مفرغة بشكل كبير ، وعادة ما يكون بها فجوة كبيرة واحدة وسيتوبلازم محيطي رقيق. النواة كبيرة وفي الخلايا المغزلية ممدودة كثيرًا. تحتوي جدران الخلايا النحوية على حقول حفرة أولية بها رابطات بيانات. الجدران الشعاعية أكثر سمكًا من الجدران العرضية ، وحقولها الأولية منخفضة بشدة.

انقسام الخلية في الكامبيوم:

نتيجة الانقسامات العرضية (المحيطية) لخلايا الكامبيوم ، يتم تشكيل اللحاء والخشب. تتشكل أنسجة الأوعية الدموية في اتجاهين متعاكسين ، خلايا نسيج الخشب باتجاه الجزء الداخلي من المحور ، وخلايا اللحاء باتجاه محيطها. تحدد التقسيمات العرضية للأحرف الأولى من الكامبيوم أثناء تكوين أنسجة الأوعية الدموية ترتيب المشتقات الكامبيوم في الصفوف الشعاعية.

نظرًا لأن الانقسام عرضي ، فإن الخلايا الوليدة التي تستمر مع الأحرف الأولى من الكامبيوم تزداد في القطر الشعاعي فقط. تزداد الأحرف الأولى من الكامبيوم الجديدة المكونة من التقسيمات المستعرضة بشكل كبير في الطول ، حيث لا يزيد طول تلك التي تشكلها التقسيمات الشعاعية.

مع زيادة سمك أسطوانة نسيج الخشب عن طريق النمو الثانوي ، تنمو الأسطوانة أيضًا في محيطها. السبب الرئيسي لهذا النمو هو زيادة عدد الخلايا في الاتجاه العرضي ، متبوعًا بالتوسع العرضي لهذه الخلايا.

نمو الكامبيوم حول الجروح:

تتمثل إحدى الوظائف المهمة للكامبيوم في تكوين نسيج الكالس أو الجرح والتئام الجروح. عندما تحدث الجروح على النباتات ، تتشكل كمية كبيرة من الأنسجة المتني الرخوة على السطح المصاب أو تحته ، يُعرف هذا النسيج باسم الكالس. يتطور الكالس من الكامبيوم وعن طريق انقسام خلايا الحمة في اللحاء والقشرة.

خلال عملية التئام الجرح يتشكل الكالس. في هذا ، يوجد في البداية تكاثر وفير لخلايا الكامبيوم ، مع إنتاج حمة ضخمة. تصبح الخلايا الخارجية لهذا النسيج متماسكة ، أو تتطور داخلها الأدمة المحيطة ، مما يؤدي إلى تكوين لحاء.

ومع ذلك ، تحت هذا اللحاء ، يظل الكامبيوم نشطًا ويشكل أنسجة وعائية جديدة بالطريقة الطبيعية. النسيج الجديد المتكون بالطريقة العادية يمتد الطبقة النامية فوق الجرح حتى يلتقي الجانبان المتعاكسان. ثم تتحد طبقات الكامبيوم ويصبح الجرح مغطى بالكامل.

الكامبيوم في مهدها وتطعيمها:

في ممارسات التبرعم والتطعيم ، يؤدي الكامبيوم الموجود في كل من الأسهم والسليل إلى ظهور الكالس الذي يوحد ويطور طبقة كامبيوم مستمرة تؤدي إلى ظهور أنسجة موصلة طبيعية. هناك اتحاد فعلي للكامبيوم للمخزون وسليل نباتين أثناء ممارسات التبرعم والتطعيم ، وبالتالي لا توجد هذه الممارسات بشكل شائع في أحادية الفلقة.

الكمبيوم في أحادي الفلقة:

يحدث نوع خاص من النمو الثانوي في أشكال قليلة أحادية الفلقة ، مثل Dracaena و Aloe و Yucca و Veratrum وبعض الأجناس الأخرى. يزداد قطر الجذع في هذه النباتات مكونًا أسطوانة من حزم جديدة مدمجة في الأنسجة.

هنا تتطور طبقة الكامبيوم من الحمة الباطنية للدورة المحيطة أو الخلايا الداخلية للقشرة. في حالة الجذور ، يتطور كامبيوم هذا في الجلد الباطن. الأحرف الأولى من حبلا الكامبيوم في طبقات لتشكيل كامبيوم طوابق كما هو موجود في الكامبيوم الطبيعي لبعض ثنائية الفلقة.

الكمبيوم في التثخين في النخيل:

لا يزيد محيط سيقان النخيل بسبب أي نشاط محوري ولكن هذا التثخين ناتج عن الزيادة التدريجية في حجم الخلايا والمساحات بين الخلايا وفي بعض الأحيان تكاثر الأنسجة الليفية. هذا هو نوع النمو الأولي المستمر الطويل.

هذه العملية هي على النحو التالي:

تفتقر معظم الفلقة الأحادية إلى النمو الثانوي ، ولكن نتيجة النمو الأولي المكثف والمستمر لفترة طويلة قد تنتج أجسامًا كبيرة مثل أجسام النخيل. غالبًا ما تنتج أحادي الفلقة سماكة سريعة أسفل النسيج الإنشائي القمي عن طريق نسيج سماكة أولي محيطي كما هو موضح في الشكل.

يشبه نشاط النسيج الإنشائي الأولي السميك النمو الثانوي الموجود في بعض الفلقة أحادية الفلقة مثل Dracaena و Yucca وما إلى ذلك. ينتج النسيج الإنشائي القمي المعروف أيضًا باسم قمة البراعم جزءًا صغيرًا فقط من الجسم الأساسي ، أي عمود مركزي من الحمة وخيوط الأوعية الدموية .

يتكون معظم جسم النبات من طبقة سماكة أولية. تم العثور على النسيج الإنشائي الأولي السميك تحت الورقة البدائية ، والتي تنقسم بشكل محيطي منتجة صفوفًا مضادة للخلايا. تتمايز هذه الخلايا إلى نسيج مكون من حمة أرضية تجتازها خيوط ما قبل الحمل.

هذه الخيوط الخيطية تتطور لاحقًا إلى حزم وعائية. تتضخم خلايا الحمة الأرضية وتنقسم بشكل متكرر ، مما يؤدي إلى زيادة السماكة. وبهذه الطريقة ، يؤدي كل من النسيج الإنشائي القمي والمريستم الأولي السماكة إلى تكوين الجزء الأكبر من الأنسجة الجذعية في أحادي الفلقة.

يحدث التثخين في أحادي الفلقة ، مثل النخيل ، بسبب أنشطة النسيج الإنشائي القمي والأرض السميك الأولي.


تكوين الغدد اللعابية واللعاب

يتم إقران الغدد اللعابية من حشرات المن ، وتحتوي الغدد اليمنى واليسرى على وحدتين غديتين ، وغدة رئيسية كبيرة وغدة ملحقة أصغر. تتحد القنوات اللعابية للوحدتين الغديتين على جانب واحد معًا ثم تنضم مجاريها المشتركة إلى القناة القادمة من الجانب المقابل. الغدة الرئيسية معصبة وتحتوي على ثماني خلايا إفرازية ، وربما تفرز مكونات مختلفة (Ponsen ، 1972). يبدو أن هذه الغدة تلعب دورًا رئيسيًا في إنتاج غمد اللعاب. لا يبدو أن الغدة الملحقة منتفخة ولا تظهر خلاياها تمايزًا كبيرًا. أظهرت دراسات انتقال فيروسات النبات الدائمة / الدائرية أن الغدد الملحقة تنقل الفيروس من الهيموليمف إلى القناة اللعابية في الأنماط وإلى النباتات (Gray and Gildow، 2003). من هذا ، تم استنتاج أن اللعاب المائي E1 يجب أن يأتي من الغدد الإضافية لأن اللعاب E1 مسؤول عن تلقيح هذه الفيروسات (Prado and Tjallingii ، 1994). لا يزال من غير الواضح ما إذا كانت الغدد الرئيسية تنتج حصريًا لعاب الغمد والغدد الملحقة اللعاب المائي. لا يمكن استبعاد أن تكوين اللعاب يأتي من كلتا الغدد. على الرغم من عدم وجود دليل تجريبي ، فإن تعصيب الغدة الرئيسية يشير إلى أن حشرات المن قد تضبط على الأقل مساهمة اللعاب من هذه الغدة على أساس المعلومات الذوقية.

في الآونة الأخيرة ، استعرض بيتر مايلز (1999) المعرفة الحالية باللعاب المن. تُظهر مكونات البروتين المنشورة الكثير من التناقضات ، ليس فقط بين أنواع المن ولكن أيضًا داخلها (Miles and Harrewijn، 1991 Baumann and Baumann، 1995 Urbanska وآخرون.، 1994 Madhusudhan and Miles، 1998 Cherqui and Tjallingii، 2000 Kornemann، 2005). تم استخدام أنظمة Parafilm® الغذائية المغطاة في الغالب لجمع اللعاب. من المحتمل ، على أساس الجوانب الحسية المذكورة أعلاه ، أن تركيبة اللعاب قد تختلف بسبب تركيبات النظام الغذائي المختلفة. علاوة على ذلك ، باستخدام جمع النظام الغذائي ، تم خلط لعاب الغمد حتما مع اللعاب المائي في حين أن فترات إفراز E1 و E2 تكون في الغالب قصيرة في الوجبات الغذائية السائلة. يعد أخذ عينات من اللعاب من مراحل سلوكية منفصلة هو الجانب الأكثر صعوبة في البحث اللعابي. لا يمكن استبعاد أنه داخل اللعاب المائي ، يختلف التركيب بين إفراز اللعاب ، وسيلان E1 ، وسيلان E2.


تشريح الساق

تتكون الأجزاء الجذعية والأعضاء النباتية الأخرى بشكل أساسي من ثلاثة أنواع من الخلايا البسيطة: الخلايا الحمة ، وخلايا الحمة ، وخلايا المصلبة. خلايا الحمة هي أكثر الخلايا النباتية شيوعًا. توجد في الساق والجذر وداخل الورقة ولب الثمرة. خلايا الحمة مسؤولة عن وظائف التمثيل الغذائي ، مثل التمثيل الضوئي. كما أنها تساعد في إصلاح الجروح وتضميدها. بالإضافة إلى ذلك ، تخزن بعض خلايا الحمة النشا.

الشكل ( PageIndex <1> ): خلايا الحمة في النباتات: يظهر ساق نبتة سانت جون ورسكوس الشائعة (Hypericum perforatum) في المقطع العرضي في هذه الصورة المجهرية الضوئية. يتكون اللب المركزي (الأزرق المخضر ، في الوسط) والقشرة المحيطية (المنطقة الضيقة 3 وخلايا ndash5 السميكة ، داخل البشرة فقط) من خلايا الحمة. الأنسجة الوعائية المكونة من نسيج الخشب (الأحمر) ونسيج اللحاء (الأخضر ، بين نسيج الخشب والقشرة) تحيط باللب.

خلايا Collenchyma عبارة عن خلايا مستطيلة ذات جدران غير متساوية السماكة. أنها توفر الدعم الهيكلي ، بشكل أساسي للساق والأوراق. تكون هذه الخلايا حية عند النضج وعادة ما توجد أسفل البشرة. & ldquostrings & rdquo لساق الكرفس هي مثال على خلايا Collenchyma.

الشكل ( PageIndex <1> ): خلايا Collenchyma في النباتات: جدران الخلايا Collenchyma غير متساوية في السماكة ، كما يظهر في هذه الصورة المجهرية الخفيفة. أنها توفر الدعم لهياكل النبات.

توفر خلايا Sclerenchyma أيضًا الدعم للنبات ، ولكن على عكس خلايا Collenchyma ، يموت الكثير منها عند النضج. هناك نوعان من الخلايا المصلبة: الألياف والصلبة. كلا النوعين لهما جدران خلوية ثانوية سميكة بترسبات من اللجنين ، وهو مركب عضوي يعد مكونًا رئيسيًا للخشب. الألياف طويلة ، والخلايا الصلبة الصلبة أصغر حجمًا. يعطي Sclereids الكمثرى قوامها الشجاع. يستخدم البشر ألياف الصلبة لصنع الكتان والحبال.

الشكل ( PageIndex <1> ): خلايا Sclerenchyma في النباتات: يتكون اللب المركزي والقشرة الخارجية من جذع الكتان (أ) من خلايا الحمة. يوجد داخل القشرة طبقة من الخلايا المصلبة ، والتي تشكل الألياف في حبل الكتان والملابس. نما البشر وحصدوا الكتان لآلاف السنين. في (ب) هذا الرسم ، تقوم نساء القرن الرابع عشر بإعداد الكتان. ينمو نبات الكتان ويحصد لأليافه التي تستخدم في نسج الكتان وبذوره التي هي مصدر زيت بذر الكتان.

كما هو الحال مع باقي النبات ، يحتوي الجذع على ثلاثة أنظمة أنسجة: الأنسجة الجلدية والأوعية الدموية والأرضية. يتميز كل منها بأنواع الخلايا المميزة التي تؤدي مهامًا محددة ضرورية لنمو النبات و rsquos وبقائه.


استمرارية الفلوم: النقل والتجديد

تتمثل إحدى الوظائف الأساسية للحاء في نقل نواتج التمثيل الضوئي من المصادر إلى الأحواض. يحدد مورفولوجيا الاتصال كيفية تحميل عناصر التمثيل الضوئي المنتجة في الخلايا المتوسطة في مجمع SE-CC لمزيد من النقل لمسافات طويلة. يتم التعرف حاليًا على ثلاث استراتيجيات رئيسية لتحميل اللحاء: التحميل النشط المتناغم المعروف باسم "مصيدة البوليمر" ، التحميل النشط من خلال apoplast والنقل السلبي الأقل دراسة جيدًا من خلال symplast (Slewinski et al. ، 2013). من المحتمل أن يمثل معقد SE-CC الذي وصفه Shih and Currier (1969) تحميل اللحاء "مصيدة البوليمر". تمكّن العديد من الوصلات المتناغمة من انتشار السكروز من خلايا الوسطية الضوئية إلى الخلايا المصاحبة هناك ، ويتم تحويلها إلى السكريات قليلة السكروز والرافينوز التي لا يمكن أن تنتشر مرة أخرى عبر PD بسبب حجمها الكبير. يخدم تخليق هذه البوليمرات في CCs هدفين مهمين. أولاً ، يحافظ على تركيز منخفض من السكروز في CC ، والذي بدوره يدفع مزيدًا من امتصاص السكروز من الخلايا الوسطية المحيطة. ثانيًا ، يؤدي التراكم المتزايد للبوليمرات في مجمع SE-CC إلى رفع الضغط الهيدروستاتيكي ، مما يتيح النقل لمسافات طويلة على طول اللحاء SEs (Turgeon et al. ، 1993 Zhang and Turgeon ، 2009).

يتم استخدام إستراتيجية تحميل مختلفة تمامًا بواسطة مصانع أرابيدوبسيس، من بين أمور أخرى. في "التحميل الساتلي" ، يتم نقل السكروز بشكل متعاطف من خلايا النسيج الوسطي الضوئية إلى خلايا نقل حمة اللحاء ، حيث يتم إفرازه بشكل نشط إلى الخلايا المصاحبة لمرض الأبوبلاست ، ثم يتم تناول السكروز بشكل نشط من الخلية الأبوبلاست. من المعروف منذ فترة طويلة أن امتصاص السكروز النشط يتم توسطه بواسطة متنازلات السكروز المقربة من H + (Haritatoset al. ، 2000 Wippel and Sauer ، 2012). ومع ذلك ، لم يتم تحديد عائلة من ناقلات تدفق السكروز (SWEET) إلا مؤخرًا ، مما يوضح آلية إفراز السكروز إلى apoplast (Chen et al. ، 2010). غالبًا ما تكون خلايا حمة اللحاء للنباتات التي يتم تحميلها بواسطة apoplastically تظهر نموًا واضحًا لجدار الخلية في واجهتها مع الخلايا المصاحبة. يُعتقد أن عدم انتظام شكل جدار الخلية هو ميزة تكيفية تزيد من حجم السكتة الدماغية ومساحة سطح غشاء البلازما الذي يستضيف تدفق السكروز وناقلات التدفق. هناك اتصالات محدودة للغاية للولادة الوراثية من CC إلى خلايا أخرى غير SE ، ربما لمنع تسرب السكروز المستورد (Henry and Steer ، 1980 Rennie and Turgeon ، 2009).

النقل السلبي هو استراتيجية تحميل اللحاء تتميز بتدفق متماثل من السكروز الذي يعتمد على تركيز أعلى من السكر في خلايا الوسطية مقارنة بمركب CC-SE. حتى الآن ، لوحظت هذه الآلية في الغالب في النباتات الخشبية. في النباتات ذات التحميل السلبي ، تقوم الخلايا المصاحبة بتطوير العديد من بيانات plasmodesmata المتفرعة بشكل متماثل لتسهيل نقل التمثيل الضوئي. للحفاظ على تدرج تركيز سكر كافٍ ، يجب أن تتراكم أوراق النباتات ذات التحميل السلبي كميات أكبر بكثير من الكربوهيدرات في خلاياها المتوسطة مقارنة بتلك الموجودة في النباتات التي تستخدم التحميل النشط (Rennie and Turgeon ، 2009).

على الرغم من أن النباتات يُنظر إليها عمومًا على أنها تستخدم نوعًا واحدًا من إستراتيجية تحميل اللحاء ، إلا أن حزم اللحاء الخاصة بها قد تحتوي على مجمعات SE-CC من أنواع مختلفة. يمنح هذا التركيب النبات المرونة للاستجابة للتغيرات في ظروف التمثيل الضوئي أو تركيزات الكربوهيدرات في أنسجة المصدر عن طريق التبديل بين آليات التحميل السلبي والنشط (Slewinski et al. ، 2013).

ثاني أكسيد الكربون المشع2 تم استخدامه كمتتبع لإزاحة اللحاء للضوئي منذ عام 1952 ، عندما أبلغ فيرنون وأرونوف (1952) عن نقل C14ا2 في فول الصويا. بالإضافة إلى ذلك ، يتم استخدام اثنين من الأصباغ الفلورية ، 5- (6) كربوكسي-فلورسين ثنائي الأسيتات (CFDA) و 8-هيدروكسيبيرين-1،3 ، 6-تريسولفونيك أسيد (HPTS-acetate) ، لتتبع التدفق عبر اللحاء (Grignon et آل ، 1989).

عندما يتم إعاقة استمرارية شبكة اللحاء بطريقة ما ، مثل الجرح ، تبدأ آلية التجديد لإعادة إنشاء الشبكة. تم وصف إعادة توصيل الأنسجة الوعائية بين اللحاء الموجود والمصاب بالتفصيل في الثمانينيات بناءً على الانقطاع التجريبي لاستمرارية اللحاء عن طريق شق شاهدة الجذر في البازلاء (بيسوم ساتيفوم L.). بعد الشق ، تم إلغاء تمايز الخلايا في الطبقة القشرية المحيطة وبدأت في الانقسامات الإنشائية. شكل تقسيم الخلايا القشرية المنشطة قوسًا يحيط بموقع الشق وأعاد توصيل الأوعية الدموية على جانبي الجرح. استطالت الخلايا المنقسمة وتمايزت إلى SE. إلى جانب SE ، تطورت عناصر نسيج الخشب في قوس داخلي أقرب إلى الجرح. تشكل الكامبيوم بين نسيج الخشب وخلايا اللحاء ، مما يضمن النمو الثانوي المستقبلي لكلا النوعين من الأنسجة الوعائية (شولز ، 1987). ومن المثير للاهتمام ، أنه في حين أن عناصر القصبة الهوائية الخشبية يمكن أن تتمايز مباشرة عن خلايا الحمة دون انقسامات سابقة ، فإن تكوين مركب SE-CC جديد يتطلب انقسامات أولية من خلايا متني غير متمايزة (Nishitani et al. ، 2002).

على مستوى البنية التحتية ، تبين أن استطالة SE ، وسماكة جدار الخلية ، وإعادة ترتيب العضيات ، والاستئصال تحدث بطريقة مماثلة أثناء التجديد وتطور اللحاء الأولي. ومع ذلك ، لا يزال من غير الواضح كيف تحدث إشارات الانقسام والتمايز المناسبين في اللحاء الجريح. بالإضافة إلى ذلك ، يتوفر القليل من المعلومات حول الآليات الجزيئية التي من خلالها يعيد اللحاء المجروح الاتصال باللحاء الموجود ، وهو سؤال يستدعي مزيدًا من الدراسة (Behnke and Schulz، 1980، 1983 Schulz، 1986a، b).

تم اقتراح Auxin كإشارة مستقلة غير خلوية محتملة تؤدي إلى تجديد الأوعية الدموية بعد الإصابة. إن إزالة الأوراق والبراعم الصغيرة ، وهي مصدر طبيعي للأوكسين في النبات ، تقلل بشدة من تجدد اللحاء. يمكن عكس هذا النقص في التجديد بالكامل عن طريق تطبيق أوكسين خارجي (Lamotte and Jacobs ، 1963). علاوة على ذلك ، يؤدي تسرب الأكسين من الأنسجة المصابة إلى انقسام الخلايا وتشكيل الكالس في الجرح. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن أن يؤدي التطبيق الموضعي للأوكسين إلى تكوين خيوط جديدة ومستمرة من الخلايا الوعائية ، والتي تتصل بعد ذلك بحزم الأوعية الدموية الموجودة. يتطابق تطور الأوعية الدموية المستحثة تجاه الجزء القاعدي من النبات مع الاتجاه القاعدي العام لحركة الأوكسين (Berleth et al. ، 2000). ومع ذلك ، لا يزال من غير الواضح تمامًا ما إذا كانت الخطوات اللاحقة لتمايز اللحاء يتم التحكم فيها أيضًا بواسطة auxin أو بواسطة جزيئات تأشير أخرى يتم توصيلها من خيوط اللحاء المتقطعة (Sawchuk and Scarpella ، 2013).


الأجسام المضادة وحيدة النسيلة ضد بروتين اللحاء P من مزارع الأنسجة النباتية. II. التوزيع التصنيفي للتفاعل المتبادل

يُعتقد أن بروتين P ، وهو بروتين خيطي موجود في عناصر الغربال لمعظم كاسيات البذور ، يعمل في سد مواقع جرح اللحاء. نُبلغ هنا عن استخدام مقايسة مناعية شديدة الحساسية لدراسة قدرة الأجسام المضادة أحادية النسيلة الخاصة ببروتين P RS21 و RS22 و RS23 ، المصنوعة ضد البروتين P من Streptanthus Tortuosus (Brassicaceae) للتعرف على البروتين P الأصلي في عدد من الأجناس النباتية المختلفة. تعرفت كل من RS21 و RS22 و RS23 على البروتين P في الأجناس الأخرى داخل الكرنب ، بما في ذلك أرابيدوبسيس وفي الأسرة ذات الصلة الوثيقة ، Capparaceae. كان RS21 و RS22 أيضًا قادرين على الارتباط ببروتين P في النباتات المرتبطة به بشكل بعيد S. تورتوسوس. كما لوحظ وضع العلامات على البروتين P في الأحاديات قزحية و نرجس سبر مع RS21. لم يُشاهد أي ملصق لأعضاء من Poaceae تم الإبلاغ عن افتقارها للبروتين P. لم يكن أي من الأجسام المضادة وحيدة النسيلة قادرًا على الارتباط بالبروتين P في أعضاء القرعيات.


23.2 ينبع

في هذا القسم سوف تستكشف الأسئلة التالية:

  • ما هي الوظيفة الأساسية والهيكل الأساسي لجذع النبات؟
  • ما هي أدوار أنسجة الجلد والأنسجة الوعائية وأنسجة الأرض؟
  • ما هو الفرق بين النمو الأولي والنمو الثانوي في السيقان؟
  • ما هو اصل الحلقات السنوية في السيقان؟ كيف تستخدم الحلقات السنوية لتقريب عمر الشجرة؟
  • ما هي أمثلة السيقان المعدلة؟

اتصال لدورات AP ®

الكثير من المحتوى الموصوف في هذا القسم لا يدخل في نطاق AP ®. لست مطالبًا بحفظ الأنواع المختلفة من الأنسجة التي يتكون منها جذع النبات. ومع ذلك ، في وحدة نقل الماء والمذابات في النباتات ، سوف نستكشف بالتفصيل أدوار أنسجة الأوعية الدموية (نسيج الخشب واللحاء) ، وخلايا حماية البشرة ، الثغور، و trichomes تلعب في النتح، امتصاص ثاني أكسيد الكربون وإطلاق الأكسجين وبخار الماء. تريشوميس- الهياكل الشبيهة بالشعر على سطح البشرة - تدافع أيضًا عن الأوراق ضد الافتراس (انظر وحدة النظم الحسية للنباتات والاستجابات).

باستثناء المفاهيم الموضحة في AP ® Connection ، فإن المعلومات المقدمة في هذه الوحدة ، والأمثلة المميزة ، تفعل ذلك ليس التوافق مع المحتوى وأهداف التعلم AP ® الموضحة في إطار منهج AP ®.

السيقان هي جزء من نظام النبتة. قد يتراوح أطوالها من بضعة مليمترات إلى مئات الأمتار ، وتتنوع أيضًا في القطر ، اعتمادًا على نوع النبات. عادة ما تكون السيقان فوق الأرض ، على الرغم من أن سيقان بعض النباتات ، مثل البطاطس ، تنمو أيضًا تحت الأرض. قد تكون السيقان عشبية (ناعمة) أو خشبية بطبيعتها. وتتمثل مهمتها الرئيسية في توفير الدعم للنبات ، وعقد الأوراق والزهور والبراعم في بعض الحالات ، كما تخزن السيقان الطعام للنبات. قد يكون الجذع غير متفرع ، مثل شجرة النخيل ، أو قد يكون شديد التشعب ، مثل شجرة ماغنوليا. يربط ساق النبات الجذور بالأوراق ، مما يساعد على نقل المياه الممتصة والمعادن إلى أجزاء مختلفة من النبات. كما أنه يساعد على نقل منتجات التمثيل الضوئي ، أي السكريات ، من الأوراق إلى باقي أجزاء النبات.

تتميز السيقان النباتية ، سواء كانت فوق الأرض أو تحتها ، بوجود العقد والعقد الداخلي (الشكل 23.4). العقد هي نقاط التعلق بالأوراق والجذور الهوائية والزهور. تسمى المنطقة الجذعية بين عقدتين انترود. القصبة الممتدة من الساق إلى قاعدة الورقة هي السويقة. ان إبطي برعم توجد عادة في الإبط - المنطقة الواقعة بين قاعدة الورقة والساق - حيث يمكن أن تؤدي إلى غصن أو زهرة. يحتوي الجزء العلوي من اللقطة على النسيج الإنشائي القمي داخل برعم قمي.

تشريح الساق

تنشأ الأعضاء الجذعية والأعضاء النباتية الأخرى من نسيج الأرض ، وتتكون بشكل أساسي من أنسجة بسيطة تتكون من ثلاثة أنواع من الخلايا: الخلايا الحمة ، والحصنة ، والخلايا الصلبة.

خلايا الحمة هي الخلايا النباتية الأكثر شيوعًا (الشكل 23.5). توجد في الساق والجذر وداخل الورقة ولب الثمرة. تعد خلايا الحمة مسؤولة عن وظائف التمثيل الغذائي ، مثل التمثيل الضوئي ، وتساعد في إصلاح الجروح وتضميدها. تقوم بعض خلايا النسيج أيضًا بتخزين النشا.

خلايا Collenchyma هي خلايا مستطيلة ذات جدران سميكة غير متساوية (الشكل 23.6). أنها توفر الدعم الهيكلي ، بشكل أساسي للساق والأوراق. تكون هذه الخلايا حية عند النضج وعادة ما توجد أسفل البشرة. تعتبر "أوتار" ساق الكرفس مثالاً على خلايا Collenchyma.

خلايا المصلبة توفر أيضًا الدعم للنبات ، ولكن على عكس خلايا Collenchyma ، يموت الكثير منها عند النضج. هناك نوعان من الخلايا المصلبة: الألياف والصلبة. كلا النوعين لهما جدران خلوية ثانوية سميكة مع ترسبات اللجنين ، وهو مركب عضوي يعد مكونًا رئيسيًا للخشب. الألياف طويلة ، والخلايا الصلبة الصلبة أصغر حجمًا. يعطي Sclereids الكمثرى قوامها الشجاع. يستخدم البشر ألياف الصلبة لصنع الكتان والحبال (الشكل 23.7).

اتصال مرئي

  1. القشرة واللب مصنوعان من خلايا النسيج.
  2. الخلايا المصاحبة للحاء هي خلايا متنمة.
  3. الخلايا الليفية للصلبة
  4. عناصر الغربال والقصائد من نسيج الخشب

مثل باقي النبات ، يحتوي الجذع على ثلاثة أنظمة أنسجة: الأنسجة الجلدية والأوعية الدموية والأرضية. يتميز كل منها بأنواع الخلايا المميزة التي تؤدي مهامًا محددة ضرورية لنمو النبات وبقائه.

الأنسجة الجلدية

يتكون النسيج الجلدي للساق بشكل أساسي من البشرة، طبقة واحدة من الخلايا تغطي وتحمي الأنسجة الأساسية. تحتوي النباتات الخشبية على طبقة خارجية صلبة مقاومة للماء من خلايا الفلين المعروفة باسم لحاء الشجر، مما يحمي النبات من التلف. خلايا البشرة هي الخلايا الأكثر عددًا والأقل تمايزًا بين الخلايا الموجودة في البشرة. تحتوي بشرة الورقة أيضًا على فتحات تُعرف باسم الثغور ، يتم من خلالها تبادل الغازات (الشكل 23.8). خليتان ، تُعرفان باسم الخلايا الحامية، تحيط بكل فغرة ورقة ، وتتحكم في فتحها وإغلاقها وبالتالي تنظيم امتصاص ثاني أكسيد الكربون وإطلاق الأكسجين وبخار الماء. Trichomes هي هياكل شبيهة بالشعر على سطح البشرة. فهي تساعد على تقليل النتح (فقدان الماء بواسطة أجزاء النبات الموجودة فوق الأرض) ، وزيادة انعكاس الشمس ، وتخزين المركبات التي تحمي الأوراق ضد الافتراس من قبل الحيوانات العاشبة.

أنسجة الأوعية الدموية

يتم ترتيب النسيج الخشبي واللحاء اللذان يشكلان الأنسجة الوعائية للساق في خيوط مميزة تسمى الحزم الوعائية ، والتي تمتد لأعلى ولأسفل بطول الساق. When the stem is viewed in cross section, the vascular bundles of dicot stems are arranged in a ring. In plants with stems that live for more than one year, the individual bundles grow together and produce the characteristic growth rings. In monocot stems, the vascular bundles are randomly scattered throughout the ground tissue (Figure 23.9).

Xylem tissue has three types of cells: xylem parenchyma, tracheids, and vessel elements. The latter two types conduct water and are dead at maturity. Tracheids are xylem cells with thick secondary cell walls that are lignified. Water moves from one tracheid to another through regions on the side walls known as pits, where secondary walls are absent. Vessel elements are xylem cells with thinner walls they are shorter than tracheids. Each vessel element is connected to the next by means of a perforation plate at the end walls of the element. Water moves through the perforation plates to travel up the plant.

Phloem tissue is composed of sieve-tube cells, companion cells, phloem parenchyma, and phloem fibers. A series of sieve-tube cells (also called sieve-tube elements) are arranged end to end to make up a long sieve tube, which transports organic substances such as sugars and amino acids. The sugars flow from one sieve-tube cell to the next through perforated sieve plates, which are found at the end junctions between two cells. Although still alive at maturity, the nucleus and other cell components of the sieve-tube cells have disintegrated. Companion cells are found alongside the sieve-tube cells, providing them with metabolic support. The companion cells contain more ribosomes and mitochondria than the sieve-tube cells, which lack some cellular organelles.

Ground Tissue

Ground tissue is mostly made up of parenchyma cells, but may also contain collenchyma and sclerenchyma cells that help support the stem. The ground tissue towards the interior of the vascular tissue in a stem or root is known as pith, while the layer of tissue between the vascular tissue and the epidermis is known as the cortex.

Growth in Stems

يحدث النمو في النباتات عندما تطول السيقان والجذور. تزداد سماكة بعض النباتات ، خاصة تلك الخشبية ، خلال فترة حياتها. يشار إلى الزيادة في طول اللقطة والجذر باسم النمو الأولي، وينتج عن انقسام الخلية في النسيج الإنشائي القمي. النمو الثانوي يتميز بزيادة سمك أو محيط النبات ، وينتج عن انقسام الخلايا في النسيج الإنشائي الجانبي. Figure 23.10 shows the areas of primary and secondary growth in a plant. غالبًا ما تخضع النباتات العشبية للنمو الأولي ، مع عدم وجود أي نمو ثانوي أو زيادة في السماكة. يُلاحظ النمو الثانوي أو "الخشب" في النباتات الخشبية ، وهو يحدث في بعض الثنائيات ، ولكنه نادرًا ما يحدث في الأحاديات.

تستمر بعض أجزاء النبات ، مثل السيقان والجذور ، في النمو طوال حياة النبات: وهي ظاهرة تسمى النمو غير المحدد. تظهر أجزاء النبات الأخرى ، مثل الأوراق والزهور ، نموًا محددًا ، والذي يتوقف عندما يصل جزء من النبات إلى حجم معين.

النمو الأولي

يحدث معظم النمو الأولي عند قمم أو أطراف السيقان والجذور. النمو الأولي هو نتيجة الانقسام السريع للخلايا في النسيج الإنشائي القمي عند طرف الجذع وطرف الجذر. يساهم استطالة الخلية اللاحقة أيضًا في النمو الأولي. يتيح نمو البراعم والجذور أثناء النمو الأولي للنباتات البحث باستمرار عن الماء (الجذور) أو أشعة الشمس (البراعم).

يُعرف تأثير البرعم القمي على النمو الكلي للنبات باسم الهيمنة القمية ، والتي تقلل من نمو البراعم الإبطية التي تتشكل على طول جوانب الفروع والسيقان. تظهر معظم الأشجار الصنوبرية هيمنة قمي قوية ، وبالتالي تنتج شكل شجرة عيد الميلاد المخروطي النموذجي. إذا تمت إزالة البرعم القمي ، فإن البراعم الإبطية ستبدأ في تكوين فروع جانبية. يستفيد البستانيون من هذه الحقيقة عندما يقومون بتقليم النباتات عن طريق قطع قمم الفروع ، وبالتالي تشجيع البراعم الإبطية على النمو ، مما يعطي النبات شكل كثيف.

ارتباط بالتعلم

Watch this BBC Nature video showing how time-lapse photography captures plant growth at high speed.

Watch this BBC Nature video showing how time-lapse photography captures plant growth at high speed.
  1. opening of a flower
  2. tendrils looping around a support
  3. growth of an apical bud
  4. closing of leaflets on a lightly touched mimosa leaf

النمو الثانوي

ترجع الزيادة في سماكة الساق الناتجة عن النمو الثانوي إلى نشاط النسيج الإنشائي الجانبي ، والذي يفتقر إلى النباتات العشبية. Lateral meristems include the vascular cambium and, in woody plants, the cork cambium (see Figure 23.10). يقع الكامبيوم الوعائي خارج نسيج الخشب الأساسي مباشرةً وإلى داخل اللحاء الأساسي. تنقسم خلايا الكامبيوم الوعائي وتشكل نسيج الخشب الثانوي (القصبات وعناصر الأوعية) إلى الداخل ، واللحاء الثانوي (عناصر الغربال والخلايا المرافقة) إلى الخارج. يعود سماكة الساق التي تحدث في النمو الثانوي إلى تكوين اللحاء الثانوي والخشب الخشبي الثانوي بواسطة كامبيوم الأوعية الدموية ، بالإضافة إلى عمل كامبيوم الفلين ، الذي يشكل الطبقة الخارجية الصلبة للساق. تحتوي خلايا نسيج الخشب الثانوي على مادة اللجنين ، والتي توفر الصلابة والقوة.

في النباتات الخشبية ، يعتبر كامبيوم الفلين هو النسيج الإنشائي الجانبي الأبعد. ينتج خلايا الفلين (اللحاء) التي تحتوي على مادة شمعية تعرف باسم السوبرين والتي يمكنها صد الماء. يحمي اللحاء النبات من التلف المادي ويساعد في تقليل فقد الماء. ينتج كامبيوم الفلين أيضًا طبقة من الخلايا تعرف باسم فيلودرم ، والتي تنمو إلى الداخل من الكامبيوم. ويطلق على كامبيوم الفلين وخلايا الفلين والفلوديرم مجتمعة اسم محيط الأدمة. بدائل الأدمة المحيطة بالبشرة في النباتات الناضجة. في بعض النباتات ، تحتوي الأدمة المحيطة على العديد من الفتحات المعروفة باسم العدس, which allow the interior cells to exchange gases with the outside atmosphere (Figure 23.11). هذا يوفر الأكسجين للخلايا الحية والنشطة الأيضية في القشرة والخشب واللحاء.

حلقات سنوية

يؤدي نشاط الكامبيوم الوعائي إلى ظهور حلقات نمو سنوية. خلال موسم النمو الربيعي ، يكون لخلايا نسيج الخشب الثانوي قطر داخلي كبير ولا تتكاثف جدرانها الخلوية الأولية على نطاق واسع. يُعرف هذا باسم الخشب المبكر ، أو خشب الربيع. خلال فصل الخريف ، يطور نسيج الخشب الثانوي جدران خلوية سميكة ، مكونة خشبًا متأخرًا ، أو خشب الخريف ، وهو أكثر كثافة من الخشب القديم. هذا التناوب بين الخشب المبكر والمتأخر يرجع إلى حد كبير إلى الانخفاض الموسمي في عدد عناصر الأوعية والزيادة الموسمية في عدد القصبات. It results in the formation of an annual ring, which can be seen as a circular ring in the cross section of the stem (Figure 23.12). يمكن أن يكشف فحص عدد الحلقات السنوية وطبيعتها (مثل حجمها وسمك جدار الخلية) عن عمر الشجرة والظروف المناخية السائدة خلال كل موسم.

Stem Modifications

Some plant species have modified stems that are especially suited to a particular habitat and environment (Figure 23.13). أ rhizome is a modified stem that grows horizontally underground and has nodes and internodes. Vertical shoots may arise from the buds on the rhizome of some plants, such as ginger and ferns. Corms are similar to rhizomes, except they are more rounded and fleshy (such as in gladiolus). Corms contain stored food that enables some plants to survive the winter. Stolons are stems that run almost parallel to the ground, or just below the surface, and can give rise to new plants at the nodes. Runners are a type of stolon that runs above the ground and produces new clone plants at nodes at varying intervals: strawberries are an example. Tubers are modified stems that may store starch, as seen in the potato (Solanum sp.). Tubers arise as swollen ends of stolons, and contain many adventitious or unusual buds (familiar to us as the “eyes” on potatoes). أ bulb, which functions as an underground storage unit, is a modification of a stem that has the appearance of enlarged fleshy leaves emerging from the stem or surrounding the base of the stem, as seen in the iris.

ارتباط بالتعلم

Watch botanist Wendy Hodgson, of Desert Botanical Garden in Phoenix, Arizona, explain how agave plants were cultivated for food hundreds of years ago in the Arizona desert in this video: Finding the Roots of an Ancient Crop.

  1. sweetener for drinks and cooking
  2. proteins to supplement the daily diet
  3. lipids for cooking and baking
  4. starch for thickening desserts and stews

Some aerial modifications of stems are tendrils and thorns (Figure 23.14). Tendrils are slender, twining strands that enable a plant (like a vine or pumpkin) to seek support by climbing on other surfaces. Thorns are modified branches appearing as sharp outgrowths that protect the plant common examples include roses, Osage orange and devil’s walking stick.

Stem regions at which leaves are attached are called ________.

Which of the following cell types forms most of the inside of a plant?

Tracheids, vessel elements, sieve-tube cells, and companion cells are components of ________.

The primary growth of a plant is due to the action of the ________.

Which of the following is an example of secondary growth?

Secondary growth in stems is usually seen in ________.

Describe the roles played by stomata and guard cells. What would happen to a plant if these cells did not function correctly?

Stomata allow gases to enter and exit the plant. Guard cells regulate the opening and closing of stomata. If these cells did not function correctly, a plant could not get the carbon dioxide needed for photosynthesis, nor could it release the oxygen produced by photosynthesis.

Compare the structure and function of xylem to that of phloem.

Xylem is made up tracheids and vessel elements, which are cells that transport water and dissolved minerals and that are dead at maturity. Phloem is made up of sieve-tube cells and companion cells, which transport carbohydrates and are alive at maturity.

Explain the role of the cork cambium in woody plants.

In woody plants, the cork cambium is the outermost lateral meristem it produces new cells towards the interior, which enables the plant to increase in girth. The cork cambium also produces cork cells towards the exterior, which protect the plant from physical damage while reducing water loss.

What is the function of lenticels?

In woody stems, lenticels allow internal cells to exchange gases with the outside atmosphere.

Besides the age of a tree, what additional information can annual rings reveal?

Annual rings can also indicate the climate conditions that prevailed during each growing season.

Give two examples of modified stems and explain how each example benefits the plant.

Answers will vary. Rhizomes, stolons, and runners can give rise to new plants. Corms, tubers, and bulbs can also produce new plants and can store food. Tendrils help a plant to climb, while thorns discourage herbivores.

بصفتنا مشاركًا في Amazon ، فإننا نكسب من عمليات الشراء المؤهلة.

هل تريد الاستشهاد بهذا الكتاب أو مشاركته أو تعديله؟ هذا الكتاب هو Creative Commons Attribution License 4.0 ويجب أن تنسب OpenStax.

    إذا كنت تعيد توزيع هذا الكتاب كله أو جزء منه بتنسيق طباعة ، فيجب عليك تضمين الإسناد التالي في كل صفحة مادية:

  • استخدم المعلومات أدناه لتوليد اقتباس. نوصي باستخدام أداة اقتباس مثل هذه.
    • المؤلفون: Julianne Zedalis، John Eggebrecht
    • الناشر / الموقع الإلكتروني: OpenStax
    • عنوان الكتاب: Biology for AP® Courses
    • تاريخ النشر: 8 مارس 2018
    • المكان: هيوستن ، تكساس
    • عنوان URL للكتاب: https://openstax.org/books/biology-ap-courses/pages/1-introduction
    • Section URL: https://openstax.org/books/biology-ap-courses/pages/23-2-stems

    © 12 كانون الثاني (يناير) 2021 OpenStax. محتوى الكتاب المدرسي الذي تنتجه OpenStax مرخص بموجب ترخيص Creative Commons Attribution License 4.0. لا يخضع اسم OpenStax وشعار OpenStax وأغلفة كتب OpenStax واسم OpenStax CNX وشعار OpenStax CNX لترخيص المشاع الإبداعي ولا يجوز إعادة إنتاجه دون الحصول على موافقة كتابية مسبقة وصريحة من جامعة رايس.


    Supplemental Information

    Examples of non-dispersive P-protein bodies (NPBs) that do not respond to wounding of sieve elements by puncturing with micro-pipettes.

    The CLSM micrographs were taken after a sieve element had been severed with a micro-pipette arrowheads point to unresponsive NPBs. In all cases, the NPBs are located close to a sieve plate (compare Fig. 5). (أ) Theobroma cacao and (B) Pombalia communis stained with aniline blue and synapto red. (ج) Viola tricolor stained with CDMFDA. The micro-pipette is visible in this image (white arrows). Scale bars: 10 μm.

    Comparison of the hypothetical product of gene Potri.017G071000.1 (from Populus trichocarpa v3.0, https://phytozome.jgi.doe.gov/pz/portal.html), PtSEOR1, and AtSEOR1.

    Positions in which Potri.017G071000.1 and PtSEOR1 differ show in red, residues that are identical in the two are shown in blue. Positions in which AtSEOR1 matches the consensus of the P. trichocarpa sequences also appear in blue. The alignment was produced with CLC Sequence Viewer v. 7.8.1.

    TEM micrographs of a sieve element in an أرابيدوبسيس leaf with bundles of SEOR protein filaments in longitudinal and perpendicular section.

    (A) cross-section of a sieve element with two slime masses consisting of filaments of SEOR protein (arrows). (B) zoom into one of the protein masses, showing longitudinal or oblique sections of the winding SEOR filaments as well as sections perpendicular to the filament axes. (C) zoom into that part of the protein mass where filaments are sectioned more or less perpendicularly. The distribution of the filament cross-sections does not follow a clear geometric pattern, indicating that the packing density does not approach its theoretical maximum. Nonetheless an early stage in the development of a hexagonal arrangement is suggested. For methods, see Froelich et al. (2011), Plant Cell 23, 4428–4445.

    Comparison of the putative promoter sequences of the P. trichocarpa genes Potri.001G430200.1 and Potri.017G071000.1, the PtSEOR1 الجين.

    Identical bases appear in blue, different bases and gaps are shown in red. The 100-bp sequence that confers phloem-specificity to the Potri.001G340200.1 promoter (Nguyen et al., 2017) and the corres-ponding sequence in Potri.017G071000.1, the PtSEOR1 gene, are shown on yellow background. Of the 100 base pairs, 71 are conserved. Note the conserved TATA-box motif at position −228. The alignment was produced with CLC Sequence Viewer v. 7.8.1.


    شاهد الفيديو: أخبار صحة - ابتكار ثوري: غراء طبي يغني عن الغرز ويشفي الجروح في ثوان (يوليو 2022).


تعليقات:

  1. Catterik

    يعض)

  2. Kenrick

    أهنئ ، الفكرة المشرقة

  3. Garvey

    يا له من موضوع جميل

  4. Kip

    برافو ، الفكرة الرائعة وهي في الوقت المناسب

  5. Raoul

    برافو ، العبارة الخاصة بك رائعة فقط

  6. Zur

    أعط أين يمكنني العثور على مزيد من المعلومات حول هذا الموضوع؟



اكتب رسالة